Перейти к:
Системно-биологический анализ синергизма магний- и пиридоксин-зависимых белков в контексте поддержки жизнедеятельности нервной системы
https://doi.org/10.17749/2070-4909/farmakoekonomika.2026.361
Аннотация
Актуальность. Магний- и пиридоксин-зависимые белки протеома человека недостаточно исследованы на системно-биологическом уровне с точки зрения их синергидного воздействия на нервную систему беременных, пациентов разных возрастных групп при применении лекарственной формы комбинации органической соли магния и пиридоксина – оригинального препарата Магне В6®.
Цель: установить механизмы воздействия магний- и пиридоксин-зависимых белков на нейрофизиологию человека и синергизма компонентов оригинального препарата, содержащего фиксированную комбинацию лактата магния и пиридоксина, на уровне протеома человека.
Материал и методы. Алгоритмы аннотации геномов/протеомов и анализа разнородных признаковых описаний, разработанные в рамках топологической теории распознавания, были применены для получения наиболее полного списка магний- и пиридоксин-зависимых белков. Последующие анализы проведены с учетом следующих данных: ключевые слова аннотаций, распределение белков в тканях, другие кофакторы белков, реактомные роли белков, функциональные категории, взаимодействия белков с различными фармацевтическими препаратами (включая другие микронутриенты и нутрицевтики), а также заболевания, ассоциированные с нарушениями активности магний-зависимых белков.
Результаты. Выявлены все возможные магний-зависимые (n=1020) и пиридоксин-зависимые (n=99) белки и отобраны белки, участвующие в функционировании нервной системы. Среди различных тканей именно головной мозг характеризуется наибольшим разнообразием магний-зависимых белков (n=244). Синергизм между магнием и пиридоксином проявляется на многих уровнях: взаимодействия с другими кофакторами, функциональные категории белков, взаимодействия с различными фармацевтическими препаратами и ассоциации с заболеваниями. Многие пиридоксин-зависимые белки взаимодействуют с теми же кофакторами, что и магний-зависимые. Пиридоксин-зависимые белки относились в основном к тем же наиболее часто встречающимся функциональным категориям, что и магний-зависимые, что указывает на очевидный синергизм магния и пиридоксина в поддержании фундаментальных физиологических процессов. В реализации нейропротекторных, нейротрофических и других нейротропных эффектов иона магния участвуют по крайней мере 172 магний-зависимых белка протеома человека и 20 пиридоксин-зависимых белков. И магний, и пиридоксин-зависимые белки важны для поддержания гомеостаза нейротрансмиттеров, нейропластичности и выживания нейронов. С функцией/активностью магний-зависимых белков ассоциированы 143 лекарственных препарата (в т.ч. ряд микронутриентов и/или нутрицевтиков), включая анестетики, анксиолитики, снотворные и седативные средства, препараты против деменции, блокаторы кальциевых каналов, сердечные гликозиды, антиаритмические средства и другие кардиопрепараты, антидепрессанты, антипсихотики, антибиотики и т.д. Взаимодействие магний-зависимых белков с указанными группами препаратов разнонаправленно. Анализ заболеваний, связанных с нарушениями функции магний-зависимых белков протеома человека, указал по крайней мере на 80 различных заболеваний, ассоциированных с дефицитом магния (судорожные состояния, нарушения неврологического развития плода, миелинизации нервов, ухудшение зрения, слуха, адаптивного поведения, когнитивные нарушения и интеллектуальный дефицит). Большинство патологий, ассоциированных с дисфункцией магний-зависимых белков, ассоциированы и с дисфункцией пиридоксин-зависимых белков. Накоплена обширная база клинических исследований применения препарата Магне В6® в неврологии и нейропедиатрии.
Заключение. Комбинирование фармацевтических форм органических солей магния (цитрата, лактата или пироглутамата) с витамином В6 в линейке лекарственных препаратов Магне В6® (Магне B6® Форте, Магне B6® (таблетки), Магне B6® (питьевой раствор)) обеспечивает синергидный нейропротекторный и нормотимический эффект. Данные доказательной медицины подтверждают фармакологическую эффективность именно для оригинального лекарственного препарата Магне В6® в клинических исследованиях.
Ключевые слова
Для цитирования:
Торшин И.Ю., Громова О.А., Рогозин М.А., Громов А.Н. Системно-биологический анализ синергизма магний- и пиридоксин-зависимых белков в контексте поддержки жизнедеятельности нервной системы. ФАРМАКОЭКОНОМИКА. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология. 2026;1(19):133-156. https://doi.org/10.17749/2070-4909/farmakoekonomika.2026.361
For citation:
Torshin I.Yu., Gromova O.A., Rogozin M.A., Gromov A.N. Synergism of magnesium- and pyridoxine-dependent proteins in nervous system support: systems biological analysis. FARMAKOEKONOMIKA. Modern Pharmacoeconomics and Pharmacoepidemiology. 2026;1(19):133-156. (In Russ.) https://doi.org/10.17749/2070-4909/farmakoekonomika.2026.361
ВВЕДЕНИЕ / INTRODUCTION
Магний является одним из четырех важнейших катионных электролитов организма, необходимых для поддержания фундаментального четырехстороннего баланса между потоками ионов Na⁺, K⁺, Ca²⁺ и Mg²⁺ внутри и снаружи клеток. Ионы магния необходимы для стабилизации структуры двойной спирали ДНК и пространственных структур РНК. Кроме того, взаимодействия Mg²⁺ с молекулой аденозинтрифосфата (АТФ) и белками протеома отвечают за широкий круг биологических ролей магния и принципиально важны для жизнедеятельности клеток всех типов, в т.ч. нейронов. Хорошо известным синергистом магния является пиридоксин (витамин В6).
В базах данных протеома (NCBI Protein, UniProt, Human Proteome Map и др.) представлено более 20 тыс. белков человека [1]. При этом точное количество белков протеома человека, активность которых в той или иной форме зависит от ионов магния и/или от пиридоксина, неизвестно. Такая зависимость может выражаться в прямом специфическом взаимодействии с функциональными участками определенных белков или во влиянии на экспрессию данного белка (через взаимодействия с другими белками).
Выявление магний- и пиридоксин-зависимых белков важно для установления воздействия этих эссенциальных микронутриентов на нервно-психическое функционирование человека и комплексных механизмов неврологического синергизма между магнием и пиридоксином [2] Молекулярные механизмы фармакологического действия, а также фармакодинамические характеристики препаратов линии Магне В6® (Sanofi, Франция) основаны на магний- и пиридоксин-зависимых белках протеома человека, особенно тех, в которые магний и пиридоксаль-5-фосфат входят как коферменты.
Цель – установить механизмы воздействия магний- и пиридоксин-зависимых белков на нейрофизиологию человека и синергизма компонентов оригинального препарата, содержащего фиксированную комбинацию лактата магния и пиридоксина, на уровне протеома человека.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ / MATERIALS AND METHODS
Этапы исследования / Study stages
Исследование включало четыре основных этапа:
– реализация конструкций топологического подхода в виде оригинальных алгоритмов распознавания и классификации магний- и пиридоксин-зависимых белков протеома человека;
– применение алгоритмов для выявления магний- и пиридоксин-зависимых белков;
– отбор белков, которые участвуют в функционировании нервной системы;
– установление механизмов нейрофизиологического синергизма между магнием и пиридоксином на уровне протеома человека.
Методы аннотации генома/протеома // Genome/proteome annotation methods
Использован разработанный ранее математический формализм для анализа разрешимости, локальности и регулярности задачи аннотации [3]. На основе понятий элементарных аминокислотных мотивов, позиционной независимости мотивов, эвристической оценки информативности и разрешимости на множествах элементарных мотивов [4] разработаны алгоритмы для вычисления наборов наиболее информативных аминокислотных мотивов, которые используются для аннотации функций белков [5], в т.ч. для выявления магний- и пиридоксин-связывающих белков.
Системно-биологический анализ / Systems biology analysis
Полученные списки магний- и пиридоксин-зависимых белков анализировались с применением метода функционального связывания [6]. Этот метод, включающий анализ различных данных (о моногенных заболеваниях, кофакторах белков, клеточных ролях белков, симптоматике и критериях диагностики заболеваний и т.д.), позволяет систематически рассмотреть все возможные биологические роли магния и пиридоксина.
Источники информации о белках / Sources of information on proteins
В настоящем исследовании приняты во внимание следующие массивы информации, найденные для магний- и пиридоксин-зависимых белков в различных базах данных по протеому человека:
– ключевые слова в аннотациях [7];
– распределение в тканях [7];
– наличие других белковых кофакторов (помимо магния и пиридоксина) [7];
– реактомные роли белков (по базе данных Reactome) [8];
– функциональные категории белков по международной номенклатуре Gene Ontology (GO) [9];
– взаимодействия с различными лекарственными средствами [7];
– заболевания, ассоциированные с нарушениями активности белков [7];
– уровни экспрессии генов [10].
Для оценки вклада именно иона магния в соответствующие физиологические процессы проводили сравнения с контрольной выборкой белков протеома, которые не являются магний-связывающими. Аналогичный анализ выполнен и для пиридоксин-зависимых белков. Отметим, что отсутствие статистической значимости по сравнению с контрольной выборкой белков не означает, что ион не влияет на соответствующий нормофизиологический процесс. Статистическая значимость отличий в числах белков просто подчеркивает исключительную важность иона магния (и/или пиридоксина) для реализации данного физиологического процесса.
Статистический анализ / Statistical analysis
Для статистической обработки материала использовали прикладную программу Statistica 6.0 (StatSoft Inc., США) и электронные таблицы Microsoft Excel (Microsoft, США). Применяли методы математической статистики, включающие расчет числовых характеристик случайных величин, проверку статистических гипотез с использованием параметрических и непараметрических критериев, корреляционного и дисперсионного анализа. Сравнение прогнозируемых и наблюдаемых частот встречаемости исследуемых признаков (в качестве признаков рассматривались наличие/отсутствие у белка той или иной функции по номенклатуре GO) проводили с помощью критерия χ², критерия Вилкоксона–Манна–Уитни и теста Стьюдента. Оценивали статистическую значимость отличий и другие показатели (отношение шансов, 95% доверительный интервал (ДИ) и др). Статистически значимыми считали отличия при р<0,05 и со значениями нижней границы 95% ДИ более 1,0.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ / RESULTS AND DISCUSSION
В результате проведенных исследований выявлены все возможные магний-зависимые (n=1020) и пиридоксин-зависимые (n=99) белки и отобраны белки, участвующие в функционировании нервной системы.
Ключевые слова в аннотациях / Keywords in annotations
Анализ наиболее частых ключевых слов в аннотациях магний-зависимых белков протеома человека показал, что подавляющее число этих белков связано с поддержанием структуры и функции РНК (n=740), включая тонкорегулируемые процессы альтернативного сплайсинга матричной РНК (n=693), являющегося подготовительной стадией к биосинтезу белка, а также связывание нуклеотидтрифосфатов АТФ (n=428) и гуанидинтрифосфатов (ГТФ) (n=153).
Существенная часть магний-зависимых белков вовлечена в различные процессы посттрансляционной модификации белков протеома, в т.ч. в ацетилирование белков (n=285), пренилирование белков (n=70) и фосфорилирование/дефосфорилирование белков: протеинкиназа (n=193), треонин-протеинкиназа (n=179), тирозин-протеинкиназа (n=24), протеинфосфатаза (n=28). Напомним, что те или иные посттрансляционные модификации важны для «тонкой настройки» функции и стабильности практически каждого из белков протеома. Фосфорилирование белков наряду с регуляцией уровней циклического аденозинмонофосфата (цАМФ) (n=29) является важнейшим методом внутриклеточной передачи сигнала.
Кроме того, магний-зависимые белки протеома участвуют в функционировании митохондрий (n=139), поддержании гомеостаза электролитов (кальций, калий, литий), репарации ДНК (n=46), а также в таких важнейших внутриклеточных процессах, как гликолиз (n=15), цикл Кребса (n=6), биогенез рибосом (n=6), аутофагия (n=15), сперматогенез (n=13), врожденный иммунитет (n=25), противовирусная защита (n=14) и передача сигналов через синапсы (n=18).
Анализ наиболее частых ключевых слов в аннотациях пиридоксин-зависимых белков протеома человека показал, что пиридоксин-зависимые белки также связаны с поддержанием структуры и функции РНК (включая альтернативный сплайсинг), ацетилированием белков, функцией митохондрий, реализацией биологических функций кальция и обменом АТФ.
Распределение белков в тканях / Distribution of proteins in tissues
Для ряда тканей (головной мозг, мышцы, сердце, почки и печень, легкие, поджелудочная железа, яички, плацента) характерна высокая встречаемость магний-зависимых белков протеома – более 100 на каждую из этих тканей (рис. 1а).
От 20 до 80 магний-зависимых белков встречаются в тканях других органов (в порядке убывания числа белков: селезенка, толстая кишка, предстательная железа, тимус, тонкая кишка, яичники, лимфатическая система, мозжечок, гиппокамп, эпителий, сетчатка глаза, кость, кожа, костный мозг). Менее 20 магний-зависимых белков найдены в лимфоцитах, матке, желудке, гладкой мускулатуре, надпочечниках, щитовидной железе, лимфатических узлах, фибробластах, сперматозоидах, таламусе, жировой ткани, Т-клетках и макрофагах, волосяных фолликулах.
В целом среди различных тканей именно головной мозг характеризуется наибольшим разнообразием магний-зависимых белков (n=244) (рис. 1b). Из них 35 встречаются в мозжечке, 29 – в гиппокампе, 20 – в спинном мозге и 11 – в таламусе.

Рисунок 1. Магний-зависимые белки протеома человека (в скобках указаны числа белков):
а – ткани, в которых представлено наибольшее количество магний-зависимых белков; b – магний-зависимые белки различных частей центральной нервной системы
Figure 1. Magnesium-dependent proteins of the human proteome (protein numbers are given in brackets):
a – tissues containing the greatest number of magnesium-dependent proteins; b – magnesium-dependent proteins of various parts of the central nervous system
Для ряда тканей (головной мозг, мышцы, сердце, почки и печень, легкие, поджелудочная железа, яички, плацента) свойственна высокая встречаемость пиридоксин-зависимых белков протеома (рис. 2а). Среди различных тканей именно головной мозг характеризуется наибольшим разнообразием пиридоксин-зависимых белков (n=29) (рис. 2b).

Рисунок 2. Пиридоксин-зависимые белки протеома человека (в скобках указаны числа белков):
а – ткани, в которых представлено наибольшее количество пиридоксин-зависимых белков; b – пиридоксин-зависимые белки различных частей центральной нервной системы
Figure 2. Pyridoxine-dependent proteins of the human proteome (protein numbers are given in brackets):
a – tissues containing the greatest number of pyridoxine-dependent proteins; b – pyridoxine-dependent proteins of various parts of the central nervous system
Другие кофакторы / Other cofactors
Многие магний-зависимые белки взаимодействуют и с другими белковыми кофакторами. Среди последних на первом месте – ион марганца Mn²⁺ (n=181), за ним следуют ионы кальция Ca²⁺ (n=126), железа Fe²⁺ (n=44), цинка Zn²⁺ (n=43) и кобальта Co²⁺ (n=13). Важно отметить, что все эти ионы двухвалентны, как и ион магния. К другим кофакторам, встречающимся вместе с ионом магния как кофактора белков, относятся тиамин (витамин В1) (n=10), гем (n=5), флавинаденин динуклеотид (n=4), железосерный кластер 4Fе–4S (n=4), пиридоксаль-5-фосфат (n=4) и ионы меди Cu²⁺ (n=3). Все эти кофакторы являются синергистами магния.
Многие пиридоксин-зависимые белки взаимодействуют с теми же кофакторами, за исключением тиамина и железосерных кластеров. Эти кофакторы являются синергистами и магния, и пиридоксина одновременно.
Реактомные роли / Reactome roles
Анализ магний-зависимых белков в соответствии с их участием в реактоме человека (т.е. в совокупности всех химических и комплексообразовательных реакций в организме человека) указал на 320 реактомных путей. Наибольшие числа магний-зависимых белков (от 10 и более) найдены в следующих сегментах реактома человека:
– посттрансляционные модификации и секреция белков (Rab-геранилирование, посттрансляционные модификации карбоксиконцевого участка тубулина, транспортировка с помощью белкового комплекса оболочки I);
– воспаление (дегрануляция нейтрофилов) и иммунитет (презентация антигена главного комплекса гистосовместимости класса II);
– внутриклеточные сигнальные каскады (сигнальные события G-альфа (s), G-альфа (i), G-альфа (z), состояние «выключено» hedgehog, взаимодействие интегринов на поверхности клеток, сборка щелевых соединений, шапероны HSP90 для рецепторов стероидных гормонов, путь ингибирования аденилатциклазы, активация сигнального каскада RAF киназно-неактивным BRAF, заякоривание базального тела к плазматической мембране в сигнальном каскаде интерлейкинов (ИЛ) 4 и 13);
– обмен углеводов (транслокация GLUT4 на плазматическую мембрану, гликолиз, сигнальный каскад глюкагона, активация протеинкиназы А в сигнальном пути глюкагона, регуляция секреции инсулина);
– нейропротекторные и нейротрофические эффекты (путь рециркуляции L1, регулирование вазопрессином почечного водного гомеостаза через аквапорины, старение, индуцированное окислительным стрессом, активация митоген-активируемой протеинкиназы (англ. mitogen-activated protein kinase, МАРК), опосредованная рецептором FCERI, активация калиевых каналов, управляемых G-белком);
– деление клеток (направление фактора NuMA в митотические центросомы, роль белка GTSE1 в прогрессировании фазы G2/M деления клетки после контрольной точки G2, кинезины, набор митотических белков и комплексов центросомы).
Важно отметить, что практически для всех указанных каскадов реактома человека число магний-зависимых белков было статистически достоверно выше, чем число белков в контрольной группе. Немногочисленные исключения составили каскады передачи сигнала от G-альфа-(i)-белков, ИЛ-4/ИЛ-13, набор митотических белков и комплексов центросомы, активация MAPK. Преобладание именно магний-зависимых белков в указанных каскадах реактома свидетельствует о том, что дефицит магния в первую очередь негативно скажется на функционировании именно этих каскадов реактома. В результате при дефиците магния существенно снижается ресурс организма относительно столь важнейших физиологических процессов, как регуляция посттрансляционных модификаций/секреции белков, воспаления и иммунитета, внутриклеточных сигнальных каскадов, обмена углеводов, деления клеток, нейропротекторных и нейротрофических эффектов.
Анализ пиридоксин-зависимых белков в соответствии с их участием в реактоме человека указал на существенное отличие от описанных выше компонентов реактома, в которых участвуют магний-зависимые белки. За исключением участия в компоненте реактома «сигнальные события G-альфа (q)», пиридоксин-зависимые белки входили в другие компоненты:
– биосинтетические пути (биосинтез сфинголипидов, ацил-кофермент А производных с жирными кислотами, метаболизм фолата и птеринов, катаболизм аминокислот с разветвленной цепью и пиримидинов, пентозофосфатный путь, метаболизм пирувата, синтез селеноцистеина и инозитол-зависимых гликозилфосфатидилинозитол-якорных белков, синтез фосфатидилэтаноламинов);
– процессы регуляции транскрипции генов, биосинтеза и секреции белков (импорт митохондриального белка, активация экспрессии генов SREBF и PPARA, транскрипционная активация митохондриального биогенеза, регуляция экспрессии метаболических генов TP53 и ChREBP);
– сигнальные каскады (сигнальный каскад тромбина, активируемый PAR-протеиназами, рецепторы пептидных лигандов).
Таким образом, реактомные роли пиридоксина существенно дополняют реактомные роли магния, тем самым расширяя спектр нейрофизиологического воздействия сочетания «магний + пиридоксин» по сравнению с просто магнием или пиридоксином.
Функциональные категории / Functional categories
Анализ функциональных категорий магний-зависимых белков по международной номенклатуре GO показал, что в целом с биологическими функциями магния ассоциировано 1503 категории GO. Наибольшие числа белков выявлены в категориях GO «цитозоль», «связывание АТФ», «связывание ионов металлов», «цитоплазма», «плазматическая мембрана» и «ядро клетки»: в каждой представлено более 300 «магниевых» белков. От 100 до 250 магний-зависимых белков представлено в функциональных категориях GO «нуклеоплазма», «клеточная мембрана», «внеклеточная экзосома», «митохондрия», «протеинсерин/треонинкиназы», «связывание ГТФ», «внутриклеточная передача сигналов» и «аппарат Гольджи».
В случае белков, связанных с функционированием нервной системы (рис. 3), наиболее представленными были категории, описывающие структурные компоненты нейронов и их соединений: «дендрит» (n=47), «тело нейрона» (n=43), «аксон» (n=36), «синапс» (n=32), «рецепторный комплекс» (n=31), «синаптический везикул» (n=19), «постсинаптическая мембрана» (n=18). От 10 до 24 белков выявлено в категориях, связанных с развитием центральной нервной системы (ЦНС) и нейропротекцией: «рост нейритов» (n=24), «аксоногенез» (n=16), «развитие мозга» (n=15), «ингибирование апоптоза нейронов» (n=11).

Рисунок 3. Категории Gene Ontology магний-зависимых белков, связанные с функционированием нервной системы
Figure 3. Gene Ontology magnesium-dependent proteins сategories associated with nervous system function
Менее 10 магний-зависимых белков входило в каждую из функциональных категорий GO белков, связанных с морфогенезом и миграцией нейронов (конус роста аксонов, дифференцировка нейронов, окончание аксона, миелинизация, аксонема, развитие нервно-мышечных соединений, потенциал нейронного действия, направление роста аксонов, развитие сетчатки глаза, регуляция аксоногенеза, регуляция развития проекций нейронов, положительная регуляция удлинения аксонов), а также с синаптической передачей сигналов (глутаматергическая синаптическая передача, синаптическая мембрана, долговременная синаптическая пластичность, активация возбуждающего постсинаптического сигнала, регуляция синаптической пластичности, метаболизм дофамина, регуляция сокращения миокарда кальцием).
Анализ функциональных категорий пиридоксин-зависимых белков по международной номенклатуре GO показал, что в целом с биологическими функциями пиридоксина ассоциировано 670 категорий GO. За исключением отдельных категорий (активность протеинсерин/треонинкиназы, связывание ГТФ, фосфорилирование белков, внутриклеточная передача сигналов), пиридоксин-зависимые белки относились к тем же наиболее частым функциональным категориям, что и магний-зависимые, что указывает на очевидный физиологический синергизм магния и пиридоксина в поддержании фундаментальных физиологических процессов («цитозоль», «связывание АТФ», «ядро клетки», «клеточная мембрана», «митохондрия» и др.).
В случае белков, связанных с функционированием нервной системы, по крайней мере некоторые из функциональных категорий магний-зависимых белков также содержали и пиридоксин-зависимые белки: категории «аксон», «окончание аксона», «дендрит», «тело нейрона», «ингибирование апоптоза нейронов». Очевидно, что все эти функциональные категории GO относятся к поддержанию пластичности нейронов, а также к реализации нейропротекторного и нейротрофического эффектов и магния, и пиридоксина.
О нейротропных функциях магний-зависимых белков / Neurotropic functions of magnesium-dependent proteins
В целом анализ функциональных категорий белков показал, что в реализации нейропротекторных, нейротрофических и других «нейротропных» эффектов иона магния участвуют по крайней мере 172 магний-зависимых белка протеома человека. Очевидно, что детальное рассмотрение структуры и функции каждого из них выходит за рамки любой статьи. Поэтому рассмотрим 40 белков, магний-зависимая активность которых, на наш взгляд, оказывает наибольшее воздействие на нервную систему человека. Эти белки участвуют в гомеостазе нейротрансмиттеров, нейропластичности и выживании нейронов. Некоторые из них могут одновременно участвовать во всех этих трех группах нейрофизиологических процессов, поэтому деление рассматриваемых белков на данные группы достаточно условно.
Гомеостаз нейротрансмиттеров
В таблице 1 приведен список основных магний-зависимых белков, участвующих в реализации эффектов ионов магния на гомеостаз нейротрансмиттеров: глутамата, дофамина, гамма-аминомасляной кислоты (ГАМК), ацетилхолина и др.
Таблица 1. Магний-зависимые белки, участвующие в реализации эффектов ионов магния на гомеостаз нейротрансмиттеров
Table 1. Magnesium-dependent proteins involved in the effects of magnesium ions on neurotransmitter homeostasis
|
Ген / Gene |
Белок / Protein |
Функция / Function |
nGO* |
|
SNCA |
Альфа-синуклеин / Alpha-synuclein |
Транспорт синаптических везикул, высвобождение нейромедиаторов, регуляция дофаминовой нейротрансмиссии / Transport of synaptic vesicles, release of neurotransmitters, regulation of dopamine neurotransmission |
5 |
|
COMT |
Катехол-О-метилтрансфераза (EC 2.1.1.6) / Catechol-O-methyltransferase (EC 2.1.1.6) |
Инактивация катехоламинов, противодействие стрессу / Inactivation of catecholamines, counteraction to stress |
4 |
|
GRIA1 |
Глутаматный рецептор GluR-1 (AMPA-селективный глутаматный рецептор 1) / Glutamate receptor GluR-1 (AMPA-selective glutamate receptor 1) |
Глутаматный АМРА-рецептор / Glutamate AMPA receptor |
4 |
|
RAB8A |
Ras-связанный белок Rab-8A / Ras-related protein Rab-8A |
Пузырьки для транспорта нейротрансмиттеров, аутофагия, экспорт нейропептидов / Vesicles for neurotransmitter transport, autophagy, neuropeptide export |
4 |
|
GRIN3A |
Ионотропный глутаматный рецептор NMDA3A / Ionotropic glutamate receptor NMDA3A |
Глутаматный NMDA-рецептор, рост дендритных шипиков / Glutamate NMDA receptor, dendritic spine growth |
4 |
|
CHRNA10 |
Субъединица альфа-10 нейронального ацетилхолинового рецептора / Neuronal acetylcholine receptor alpha-10 subunit |
Ацетилхолиновый рецептор симпатических нейронов, модуляция слуховой активности, защита от гиперакузии / Acetylcholine receptor of sympathetic neurons, modulation of auditory activity, protection against hyperacusis |
3 |
|
GRIA4 |
Глутаматный рецептор GluR4 (AMPA4) / Glutamate receptor GluR4 (AMPA4) |
Ионотропный глутаматный АМРА-рецептор / Ionotropic glutamate AMPA receptor |
3 |
|
GRIN1 |
Ионотропный глутаматный рецептор NMDA1 / Ionotropic glutamate receptor NMDA1 |
Глутаматный NMDA-рецептор / Glutamate NMDA receptor |
3 |
|
GRIN2B |
Ионотропный глутаматный рецептор NMDA2B / Ionotropic glutamate receptor NMDA2B |
Глутаматный NMDA-рецептор / Glutamate NMDA receptor |
3 |
|
KCNC2 |
Калиевый канал, управляемый напряжением KCNC2 (Kv3.2) / Voltage-gated potassium channel KCNC2 (Kv3.2) |
Регуляция быстрой реполяризации потенциала действия, синаптическая передача в ГАМКергических нейронах / Regulation of fast action potential repolarization, synaptic transmission in GABAergic neurons |
3 |
|
MINK1 |
Киназа Misshapen-1 (MAPK/ERK киназа MEKKK6) / Misshapen like kinase 1 (MAPK/ERK kinase MEKKK6) |
Транспорт AMPA-глутаматных рецепторов, регуляция синаптической плотности и сложности дендритов / AMPA-glutamate receptor transport, regulation of synaptic density and dendritic complexity |
3 |
|
CHRNA9 |
Субъединица альфа-9 ацетилхолинового рецептора / Alpha-9 acetylcholine receptor subunit |
Нейрональные рецепторы ацетилхолина, слуховая и вестибулярная системы / Neuronal acetylcholine receptors, auditory and vestibular systems |
2 |
|
GRIN2A |
Ионотропный глутаматный рецептор NMDA2A / Ionotropic glutamate receptor NMDA2A |
Глутаматные NMDA-рецепторы, синаптическая пластичность, обучение и память / Glutamate NMDA receptors, synaptic plasticity, learning and memory |
2 |
|
HTR3A |
5-гидрокситриптаминовый рецептор 3A / 5-hydroxytryptamine receptor 3A |
Серотониновый рецептор / Serotonin receptor |
2 |
|
LMTK3 |
Серин/треонин-протеинкиназа LMTK3 // Serine/threonine protein kinase LMTK3 |
Транспорт NMDA-рецепторов / NMDA receptor transport |
2 |
|
P2RX3 |
Пуринорецептор P2X3 / Purinoreceptor P2X3 |
Вкусовые, ноцицептивные реакции / Taste and nociceptive reactions |
2 |
|
ITGB3 |
Интегрин бета-3 (GPIIIa, CD61) / Integrin beta 3 (GPIIIa, CD61) |
Синаптическая передача и пластичность, серотониновая нейротрансмиссия, эндоцитоз глутаматных AMPA-рецепторов / Synaptic transmission and plasticity, serotonin neurotransmission, endocytosis of glutamate AMPA receptors |
2 |
Примечание. АМРА (англ. alpha-amino-3-hydroxy-5-methyl-4-isoxazolepropionic acid) – альфа-амино-3-гидрокси-5-метил-4-изоксазолпропионовая кислота; NMDA (англ. N-methyl-D‑aspartate) – N-метил-D‑аспартат; MAPK (англ. mitogen-activated protein kinase) – митоген-активируемая протеинкиназа; ERK (англ. extracellular-regulated kinase) – внеклеточно регулируемая киназа; LMTK3 (англ. lemur tyrosine kinase 3 (human)) – тирозинкиназа-3 лемуров человека; ГАМК – гамма-аминомасляная кислота. * nGO – число «неврологических» категорий Gene Ontology, по которым рубрицирован данный белок (белки упорядочены по убыванию чисел).
Note. АМРА – alpha-amino-3-hydroxy-5-methyl-4-isoxazolepropionic acid; NMDA – N-methyl-D‑aspartate; MAPK – mitogen-activated protein kinase; ERK – extracellular-regulated kinase; LMTK3 – lemur tyrosine kinase 3 (human); GABA – gamma-aminobutyric acid. * nGO – number of “neurological” Gene Ontology categories into which a given protein was categorized (proteins are sorted in descending order of numbers).
Прежде всего следует рассмотреть участие ионов магния в регуляции глутаматергической нейротрансмиссии. Оно включает не только взаимодействия с глутаматными рецепторами различных типов рецепторов (N-метил-D‑аспартата (англ. N-methyl-D‑aspartate, NMDA), альфа-амино-3-гидрокси-5-метил-4-изоксазолпропионовой кислоты (англ. alpha-amino-3-hydroxy-5-methyl-4-isoxazolepropionic acid, АМРА)), но и со вспомогательными белками, способствующими экспрессии и функционированию глутаматных рецепторов. Как известно, L-глутамат действует как возбуждающий нейромедиатор во многих синапсах ЦНС.
Рассмотрим наиболее известный случай – воздействие магния на регуляцию активности NMDA-рецепторов глутамата. Например, ионотропный глутаматный рецептор NMDA3A (ген GRIN3A) – компонент NMDA-рецепторов, функционирующих как гетеротетрамерные лиганд-управляемые катионные каналы с низкой проницаемостью для кальция и низкой напряжение-зависимой блокадой ионом Mg²⁺. Каждая субъединица тетрамера рецептора придает каналу различные свойства, включая кинетику активации, деактивации и десенсибилизации, чувствительность к pH, проницаемость для Ca²⁺ и связывание с аллостерическими модуляторами [1].
Ион магния в поре рецептора регулирует степень ответа рецептора на действие глутаминергических агонистов и отсутствие иона магния (рис. 4). Отсутствие ионов Mg²⁺ в структуре глутаматных рецепторов приводит к гиперактивности глутаматергической нейротрансмиссии, что способствует усилению воздействия стресса на ЦНС и стимулирует эксайтотоксичность глутамата. В процессе развития нейронных сетей активированный агонистами NMDA3A рецептор участвует в ограничении созревания и росте дендритных шипиков. С клинической точки зрения избыточная активность NMDA-рецепторов на фоне дефицита магния выражается в гиперактивности и эмоциональной лабильности поведения [1].

Рисунок 4. Ионотропный глутаматный рецептор NMDA3A (ген GRIN3A):
a – экспрессия в тканях; b – пространственная структура (показан сайт связывания иона магния (зеленые сферы), модель на основе файла PDB 8usx)
Figure 4. Ionotropic glutamate receptor NMDA3A (GRIN3A gene):
a – tissue expression; b – spatial structure (the magnesium ion binding site is shown (green spheres); model based on PDB file 8usx)
Ионотропный глутаматный рецептор NMDA2A (ген GRIN2A) – компонент NMDA-рецепторов [11], участвует в синаптической пластичности для обучения и формирования памяти, способствуя медленной фазе возбуждающего постсинаптического тока, долговременной синаптической потенциации и обучению. Активация канала NMDA2A требует связывания нейромедиатора L-глутамата с субъединицей GluN2, связывания глицина или D‑серина с субъединицей GluN1, а также деполяризации мембраны для устранения ингибирования канала Mg²⁺ [12]. Рецептор участвует в регуляции синаптической пластичности посредством активации L-глутаматом, высвобождаемым BEST1 в синаптическую щель [13]. Все это относится не только к глутаматному рецептору NMDA3A, но и к другим разновидностям глутаматных рецепторов, перечисленных в таблице 1 (NMDA2B, GRIN1, АМРА и др.).
Вспомогательные магний-зависимые белки, участвующие в регуляции глутаматергической нейротрансмисии, включают, в частности, киназу MEKKK6, интегрин бета-3 и серин/треонин-протеинкиназу LMTK3.
Магний-зависимая киназа Misshapen-1 (MAPK/ERK киназа MEKKK6, ген MINK1) – серин/треонинкиназа, которая контролирует структуру нейронов и транспорт AMPA-глутаматных рецепторов посредством сигнального каскада Ras/Rap2 [14]. Она необходима для поддержания нормальной синаптической плотности нейронных сетей, сложности дендритов, а также экспрессии AMPA-рецепторов на поверхности нейронов гиппокампа. Активирует сигнальные пути JNK и MAPK14/p38 и опосредует стимуляцию стресс-активированной протеинкиназы MAPK14/p38 в каскаде Raf/ERK. Также активирует сигнальный путь Hippo, который играет ключевую роль в контроле размера органов и подавлении опухолей, ограничивая пролиферацию и способствуя апоптозу опухолевых клеток [15]. Напомним, что для нормального функционирования памяти и когнитивных способностей необходима достаточная синаптическая плотность нейронов, особенно в центральной коре и гиппокампе. И наоборот, сниженная плотность синапсов связана с психическими и когнитивными нарушениями при ожирении [16].
Магний-зависимая субъединица интегрина бета-3 (гликозилфосфатидилинозитол IIa, CD61, ген ITGB3) участвует в образовании интегринов альфа-V/бета-3 и альфа-IIb/бета-3, которые играют роль в синаптической передаче, пластичности головного мозга и серотониновой нейротрансмиссии [17]. Адекватная работа серотониновых рецепторов необходима для профилактики тревожных состояний, расстройств настроения и сна [18].
Серин/треонин-протеинкиназа LMTK3 (ген LMTK3) – еще один магний-зависимый белок, участвующий во внутриклеточном транспорте NMDA-рецепторов в нейронах. LMTK3 фосфорилирует эстрогеновый рецептор ESR1, защищает его от протеасомной деградации, а также регулирует уровни эстрогеновых рецепторов через сигнальный путь PKC-AKT-FOXO3 [19].
Магний-зависимый белок катехол-О-метилтрансфераза (КОМТ) (ген COMT) катализирует O-метилирование и, следовательно, инактивацию катехоламиновых нейромедиаторов, избыточно образующихся при стрессе и перевозбуждении. КОМТ также регулирует время полувыведения (T1/2) некоторых нейроактивных препаратов (леводопа, изопротеренол) [20]. Хорошо известно, что ион магния в активном центре КОМТ принципиально необходим для поддержания активности фермента (рис. 5), что является одним из основных механизмов противодействия магния воздействию катехоламинового стресса на ЦНС [1].

Риснок 5. Катехол-О-метилтрансфераза (ген COMT):
а – экспрессия в тканях; b – пространственная структура (показан сайт связывания иона магния (желтая сфера), модель на основе файла PDB 3a7e)
Figure 5. Catechol-O-methyltransferase (COMT gene):
а – tissue expression; b – spatial structure (the magnesium ion binding site is shown (yellow sphere); model based on PDB file 3a7e)
Магний необходим и для поддержания нормофизиологических уровней холинергической нейротрансмиссии, в т.ч. через спицифические взаимодействия с субъединицами холинергических рецепторов типа альфа-9 и альфа-10. Субъединица альфа-10 нейронального ацетилхолинового рецептора (ген CHRNA10) входит в состав нейрональных ацетилхолиновых рецепторов (АХР), которые функционируют как пентамерные, лиганд-управляемые катионные каналы с высокой проницаемостью для кальция. Каждая субъединица АХР придает каналу различные свойства, включая кинетику активации, деактивации и десенсибилизации, чувствительность к pH, проницаемость для катионов и связывание с аллостерическими модуляторами. Субъединицы альфа-9 и альфа-10 АХР экспрессируются во внутреннем ухе, симпатических нейронах и участвуют в регулировании слуховой активности [21].
Для регуляции ГАМКергической нейротрансмиссии важна активность магний-зависимых калиевых каналов. Калиевый канал Kv3.2, управляемый напряжением (ген KCNC2), опосредует трансмембранный транспорт калия в нейронных мембранах и способствует регуляции быстрой реполяризации потенциала действия и поддержанию высокочастотной активности нейронов ЦНС. Свойства канала модулируются ассоциацией со вспомогательными субъединицами KCNE1, KCNE2, KCNE3 или с оксидом азота (NO) через сигнальный каскад, опосредованный циклическим ГМФ и протеинкиназой G, замедляя активацию канала и деактивацию задержанных выпрямляющих калиевых каналов. Канал KCNC2 способствует генерации устойчивых серий импульсов с высокой частотой в ганглиозных клетках сетчатки, нейронах таламокортикального и супрахиазматического ядер, а также в интернейронах гиппокампа и неокортекса [22].
Магний-зависимый 5-гидрокситриптаминовый рецептор 3A (ген HTR3A) образует активируемые серотонином (5-гидрокситриптамином) катион-селективные рецепторные комплексы, которые при активации вызывают быстрые деполяризующие реакции в нейронах [23].
Пуринорецептор P2X3 (ген P2RX3) – внеклеточный АТФ-активируемый неселективный катионный канал, который играет важную роль в сенсорных нейронах, где его активация имеет решающее значение для вкусовых, ноцицептивных реакций, висцеральных рефлексов и сенсорной гиперчувствительности [24]. При гипомагниемии снижается порог вкусовой чувствительности к соленой пище, что может приводить к избыточному потреблению поваренной соли и стимулировать повышение артериального давления [1].
В таблице 1 приведены примеры вспомогательных магний-зависимых белков, важных для нейротрансмисии любых типов, в т.ч. альфа-синуклеин и Ras-связанный белок Rab-8A. Оба эти белка важны для везикулярного (пузырькового) транспорта нейротрансмиттеров различных типов. Так, альфа-синуклеин (ген SNCA) – белок нейронов, участвующий в поддержке транспорта синаптических везикул (пузырьков) и высвобождения из них нейромедиаторов. Альфа-синуклеин участвует в экзоцитозе синаптических везикул, включая их подготовку, слияние и расширение [25]. Ras-связанный белок Rab-8A (ген RAB8A) является регулятором внутриклеточного мембранного транспорта, участвует в образовании везикул для транспорта нейротрансмиттеров и их слияния с синаптическими мембранами. Кроме того, RAB8A и другие белки группы Rab играют роль в индуцированном инсулином транспорте к плазматической мембране транспортера глюкозы GLUT4 и, следовательно, в гомеостазе глюкозы [26].
Поддержание нейропластичности
В таблице 2 перечислены магний-зависимые белки с наибольшими числами «неврологических» категорий GO, участвующие в реализации эффектов ионов магния на нейропластичность. Эти белки влияют на образование и поддержку структуры синапсов, дифференцировку нейронов, рост дендритов и многие другие аспекты нейропластичности.
Таблица 2. Магний-зависимые белки, участвующие в реализации эффектов ионов магния на нейропластичность
Table 2. Magnesium-dependent proteins involved in the effects of magnesium ions on neuroplasticity
|
Ген / Gene |
Белок / Protein |
Функция / Function |
nGO* |
|
LRRK2 |
Серин/треонин-протеинкиназа 2 с лейциновыми повторами (дардарин) // Serine/threonine protein kinase 2 with leucine repeats (dardarin) |
Нейрональная пластичность, транспорт синаптических пузырьков, SHH-опосредованный нейротрофический эффект, аутофагия / Neuronal plasticity, synaptic vesicle transport, SHH-mediated neurotrophic effect, autophagy |
6 |
|
CIB1 |
Кальций- и интегрин-связывающий белок 1 (кальмирин) / Calcium- and integrin-binding protein 1 (calmyrin) |
Дифференцировка нейронов, ангиогенез, апоптоз, кроветворение / Neuronal differentiation, angiogenesis, apoptosis, hematopoiesis |
4 |
|
MAST1 |
Серин/треонин-протеинкиназа 1, ассоциированная с микротрубочками // Microtubule-associated serine/threonine protein kinase 1 |
Развитие мозга / Brain development |
4 |
|
TUBB3 |
Бета-3 цепь тубулина / Beta-3 tubulin chain |
Направление роста и поддержание структуры аксонов / Direction of growth and maintenance of axon structure |
4 |
|
KIF1A |
Кинезиноподобный белок KIF1A / Kinesin-like protein KIF1A |
Транспорт синаптических везикул к дендритным шипикам и аксонам / Transport of synaptic vesicles to dendritic spines and axons |
3 |
|
ADCY8 |
Аденилатциклаза-8, активируемая кальмодулином / Calmodulin-activated adenylate cyclase 8 |
Синаптическая пластичность, обучение, память, нейротрансмиттерные везикулы / Synaptic plasticity, learning, memory, neurotransmitter vesicles |
2 |
|
BRSK1 |
Серин/треонин-протеинкиназа-1, селективная для мозга // Brain-selective serine/threonine protein kinase 1 |
Поляризация нейронов, синаптические везикулы, высвобождение нейротрансмиттеров / Neuronal polarization, synaptic vesicles, neurotransmitter release |
2 |
|
SEPTIN4 |
Септин-4 (брадеион бета, мозговой белок H5) / Septin-4 (brain protein H5, bradeion beta) |
Миграция кортикальных нейронов, формирование отростков нейронов, дофаминергический метаболизм / Cortical neuron migration, neuronal process formation, dopaminergic metabolism |
2 |
|
BRSK2 |
Серин/треонин-протеинкиназа-2, селективная для мозга // Brain-selective serine/threonine protein kinase 2 |
Поляризация нейронов, аксоногенез, регуляция апоптоза нейронов / Neuronal polarization, axonogenesis, neuronal apoptosis regulation |
2 |
|
CCND1 |
G1/S-специфический циклин-D1 (BCL-1) / G1/S-specific cyclin D1 (BCL-1) |
Деление нейрональных клеток-предшественников / Division of neuronal progenitor cells |
2 |
|
ROR2 |
Нейротрофическая тирозин-протеинкиназа ROR2 / Neurotrophic tyrosine-protein kinase ROR2 |
Wnt-опосредованный нейротрофический эффект / Wnt-mediated neurotrophic effect |
2 |
Примечание. SHH (англ. sonic hedgehog) – «сверхзвуковой ежик»; nGO – число «неврологических» категорий Gene Ontology, по которым рубрицирован данный белок (белки упорядочены по убыванию чисел).
Note. SHH – sonic hedgehog; nGO – number of “neurological” Gene Ontology categories into which a given protein was categorized (proteins are sorted in descending order of numbers).
Многие белки нейропластичности участвуют в везикулярном (пузырьковом) транспорте в нейронах, в т.ч. в синапсах. Эти процессы тесно взаимосвязаны с ростом нейритов и другими факторами нейропластичности. Например, серин/треонин-протеинкиназа 2 с лейциновыми повторами (дардарин, ген LRRK2) фосфорилирует белки (например, RAB3A, RAB3B, RAB3C, RAB3D, RAB5A, RAB5B, RAB5C, RAB8A и др.), участвующие в нейрональной пластичности, врожденном иммунитете, аутофагии и транспорте синаптических везикул [27]. Через фосфорилирование белков RAB8A и RAB10 она способствует нейротрофической передаче сигналов каскада SHH (англ. sonic hedgehog – «сверхзвуковой ежик») в головном мозге [28], поддерживая целостность морфологии ЦНС при эмбриональном развитии [29]. LRRK2 активирует аутофагию дисфункциональных белков посредством кальций-зависимой активации сигнального пути CaMKK/AMPK [30] и рецепторов никотинаденин-динуклеотидфосфата.
Кинезиноподобный белок KIF1A (ген KIF1A) – кинезиновый мотор на микротрубочках нейронов, который необходим для антероградного аксонального транспорта синаптических везикул [31] и для доставки нейрональных везикул к аксонам и дендритным шипикам.
Ионы магния принципиально необходимы для активности ферментов-аденилатциклаз (которых более 10 в протеоме человека). Несмотря на участие в передаче сигнала от рецепторов, общее для всех аденилатциклаз, каждая из них характеризуется особой ролью в нервной системе. Например, аденилатциклаза-8, активируемая кальмодулином (ген ADCY8), катализирует образование цАМФ в ответ на поступление кальция, что приводит к активации цАМФ-сигнализации, влияющей на синаптическую пластичность. ADCY8 задействован во многих функциях мозга (обучение, память, модуляция тревожности) посредством регуляции синаптической пластичности путем модуляции долговременной памяти и долговременной потенциации через модуляцию активности транскрипционного фактора CREB. ADCY8 также играет центральную роль в секреции инсулина, контролируя гомеостаз глюкозы через глюкагоноподобный пептид-1 и сигнальный путь глюкозы, и поддерживает секрецию инсулина посредством кальций-зависимой активации протеинкиназы А, приводящей к пополнению пула нейротрансмиттерных везикул.
Кальций- и интегрин-связывающий белок 1 (кальмирин, ген CIB1) регулирует деление и дифференцировку нейронов, ангиогенез, гемостаз и апоптоз. Он функционирует как негативный регулятор сигнальных путей стресс-активированной MAPK, а также участвует в транслокации сфингозин-киназы SPHK1 к плазматической мембране зависимым от N-миристоилирования образом, предотвращая апоптоз нейронов, индуцированный фактором некроза опухоли альфа. Кальмирин играет роль в динамике самосборки и саморазборки микротрубочек во время развития нейронов, нарушает активность деполимеризации микротрубочек STMN2, регулируя рост нейритов, индуцированный нейротрофическим фактором роста нервов. При ишемически-индуцированном ангиогенезе кальмирин стимулирует пролиферацию, миграцию и образование микрососудистого русла мозга посредством активации сигнальных путей PAK1 и ERK1/ERK2 [32][33]. Кроме того, кальмирин участвует в дифференцировке мегакариоцитов костного мозга, регулируя сигнальный путь, опосредованный тромбопоэтином [34].
Серин/треонин-протеинкиназа-1, ассоциированная с микротрубочками (ген MAST1), – микротрубочко-ассоциированный белок, необходимый для развития мозга в эмбриональном периоде, т.к. связывает сеть дистрофина/утрофина с микротрубочковыми филаментами посредством синтрофинов и путем фосфорилирования белков DMD и UTRN [35].
G1/S-специфический циклин BCL-1 (ген CCND1) – регуляторный компонент комплекса «циклин D1-CDK4», который фосфорилирует/ингибирует сигнальный белок RB1 и регулирует цикл клеточного деления нейрональных предшественников. Фосфорилирование белка RB1 позволяет диссоциировать транскрипционный фактор E2F из комплекса RB/E2F и последующую транскрипцию целевых генов E2F, ответственных за прогрессирование деления нейронов [36].
Септин-4 (брадеион-бета, мозговой белок H5, ген SEPTIN4) участвует в миграции кортикальных нейронов и формировании ведущих отростков нейронов во время эмбрионального развития. Он необходим для дофаминергического метаболизма в пресинаптических окончаниях нейронов [37].
Нейротрофическая тирозин-протеинкиназа ROR2 (ген ROR2) действует как рецептор для лиганда Wnt WNT5A, что приводит к ингибированию WNT3A-опосредованной сигнализации и оказывает нейротрофический эффект [38].
Серин/треонин-протеинкиназа-2, селективная для мозга (ген BRSK2), играет ключевую роль в поляризации нейронов и аксоногенезе, прогрессе цикла клеточного деления нейронов, фосфорилирует CDK16, CDC25C, MAPT/TAU, PAK1 и WEE1. Участвует в регуляции секреции инсулина в ответ на повышенный уровень глюкозы посредством фосфорилирования CDK16 и PAK1 [39]. BRSK2 тормозит апоптоз нейронов при ишемическом стрессе [40].
Выживание нейронов
Магний-зависимые белки, участвующие в реализации эффектов ионов магния на выживание нейронов (табл. 3), связаны, в частности, с выживанием нейронов (включая антиоксидантное действие и восстановление/ремонт ДНК), торможением эксайтотоксичности и поддержанием энергетического метаболизма нейронов.
Таблица 3. Магний-зависимые белки, участвующие в реализации эффектов ионов магния на выживание нейронов
Table 3. Magnesium-dependent proteins involved in the effects of magnesium ions on neuronal survival
|
Ген / Gene |
Белок / Protein |
Функция / Function |
nGO* |
|
ATP7A |
Транспортирующая медь АТФаза-1 (медный насос 1) / Copper transporter ATPase-1 (copper pump 1) |
Выживание нейронов, регуляция уровня меди, передача сигнала в синапсах, биосинтез дофамина и других нейромедиаторов, синаптические пузырьки / Neuronal survival, copper regulation, synaptic signaling, dopamine and other neurotransmitter biosynthesis, synaptic vesicles |
7 |
|
ABL1 |
Тирозин-протеинкиназа Абельсона 1 / Abelson tyrosine-protein kinase 1 |
Рост и выживание нейронов, аутофагия, ответ на повреждение ДНК, сигнальные каскады нейронов, формирование нервно-мышечных синапсов / Neuronal growth and survival, autophagy, DNA damage response, neuronal signaling cascades, formation of neuromuscular synapses |
5 |
|
KCNA1 |
Калиевый потенциал-зависимый канал A1 (Kv1.1) / Potassium voltage-gated channel A1 (Kv1.1) |
Регуляция мембранного потенциала, предотвращение нейрональной гипервозбудимости, регуляция высвобождения ГАМК, слух / Regulation of membrane potential, prevention of neuronal hyperexcitability, regulation of GABA release, hearing |
4 |
|
PAK1 |
Серин/треонин-протеинкиназа PAK1 // Serine/threonine protein kinase PAK1 |
Динамика цитоскелета нейронов, защита нейронов от апоптоза, формирование нервно-мышечных соединений, ГАМКергическая нейротрансмиссия / Neuronal cytoskeleton dynamics, protection of neurons from apoptosis, formation of neuromuscular junctions, GABAergic neurotransmission |
3 |
|
PI4K2A |
Фосфатидилинозитол-4-киназа типа 2-альфа // Phosphatidylinositol 4-kinase type 2-alpha |
Выживание нейронов, фосфатидилинозитоловые сигнальные каскады нейрорецепторов / Neuronal survival, phosphatidylinositol signaling cascades of neuroreceptors |
3 |
|
PINK1 |
Серин/треонин-протеинкиназа PINK1 // Serine/threonine protein kinase PINK1 |
Сенсор повреждения митохондрий, митофагия / Mitochondrial damage sensor, mitophagy |
3 |
|
MAPK8 |
Митоген-активируемая протеинкиназа-8 / Mitogen-activated protein kinase 8 |
Дифференцировка и апоптоз нейронов, ответ на окислительный стресс / Neuronal differentiation and apoptosis, response to oxidative stress |
2 |
|
MARK4 |
Митоген-активируемая протеинкиназа / киназа 4, регулирующая сродство к микротрубочкам // Mitogen-activated protein kinase / microtubule affinity-regulating kinase 4 |
Удлинение аксонемы, деление нейронов, энергетический гомеостаз, ингибирование mTOR / Axoneme elongation, neuronal division, energy homeostasis, mTOR inhibition |
2 |
|
NMNAT3 |
Аденилилтрансфераза мононуклеотида никотинамида-3 / Nicotinamide 3 mononucleotide adenylyltransferase |
Целостность аксонов / Axonal integrity |
2 |
|
ATP13A2 |
Полиамин-транспортирующая АТФаза 13A2 / Polyamine transporting ATPase 13A2 |
Защита нейронов от токсичности полиаминов, гомеостаз цинка, аутофагия / Protection of neurons from polyamine toxicity, zinc homeostasis, autophagy |
2 |
|
NMNAT2 |
Аденилилтрансфераза мононуклеотида никотинамида-2 / Nicotinamide 2 mononucleotide adenylyltransferase |
Выживание аксонов, репарация поврежденных аксонов / Axonal survival, repair of damaged axons |
2 |
Примечание. АТФ – аденозинтрифосфат; ДНК – дезоксирибонуклеиновая кислота; ГАМК – гамма-аминомасляная кислота; mTOR (англ. mammalian target of rapamycin) – мишень рапамицина у млекопитающих; nGO – число «неврологических» категорий Gene Ontology, по которым рубрицирован данный белок (белки упорядочены по убыванию чисел).
Note. ATP – adenosine triphosphate; DNA – deoxyribonucleic acid; GABA – gamma-aminobutyric acid; mTOR – mammalian target of rapamycin; nGO – number of “neurological” Gene Ontology categories into which a given protein is categorized (proteins are sorted in descending order of numbers).
Как было показано ранее, магний-зависимые белки могут содержать и другие кофакторы – в частности, ионы меди. Например, магний-зависимая медь-транспортирующая АТФаза-1 (медный насос 1, ген ATP7A) – АТФ-зависимый медьсодержащий ионный насос [41], важный для функционирования и выживания нейронов. Он регулирует отток меди и передачу сигнала в синапсах, а также обеспечивает поступление ионов Cu⁺ к антиоксидантному ферменту супероксиддисмутазе и медь-зависимым ферментам, участвующим в биосинтезе дофамина и других нейромедиаторов [42]. При низкой концентрации меди в цитозоле этот белок локализуется в транс-Гольджи сети, где он переносит ионы Cu⁺ к медьсодержащим ферментам секреторного пути [41]. При повышении концентрации меди в цитозоле ATP7A перемещается к плазматической мембране, где экспортирует избыток ионов Cu⁺ [43].
Тирозин-протеинкиназа Абельсона 1 (ген ABL1) – нерецепторная тирозин-протеинкиназа, необходимая для роста и выживания нейронов, которая регулирует подвижность и адгезию клеток, эндоцитоз рецепторов, аутофагию, апоптоз и ответ на повреждение ДНК (рис. 6). Она координирует ремоделирование актина посредством тирозинового фосфорилирования белков, контролирующих динамику цитоскелета (DBN1, DBNL, CTTN, RAPH1 и ENAH) и участвующих в сигнальных каскадах нейронов. Фосфорилируя белки BCAR1, CRK, CRKL, DOK1, EFS, MUSK, NEDD9 [44], киназа ABL1 способствует формированию нервно-мышечных синапсов. ABL1 участвует в аутофагии, положительно регулируя транспорт и функцию лизосомальных компонентов. Многие субстраты ABL1-киназы (DDB1, DDB2, ERCC3, ERCC6, RAD9A, RAD51, RAD52, WRN) являются медиаторами репарации повреждений ДНК [44].

Рисунок 6. Тирозин-протеинкиназа Абельсона 1 (ген ABL1):
a – экспрессия в тканях; b – пространственная структура (показан сайт связывания ионов магния (зеленая сфера), модель на основе файла PDB 2FO0)
Figure 6. Abelson tyrosine-protein kinase-1 (ABL1 gene):
a – tissue expression; b – spatial structure (magnesium binding site is shown (green sphere); model based on PDB file 2FO0)
Калиевый потенциал-зависимый канал A1 (Kv1.1, ген KCNA1) – субъединица А1 калиевого канала, управляемого напряжением, опосредует трансмембранный транспорт калия в нейронах [45]. К-канал способствует регуляции мембранного потенциала и нервной сигнализации, а также предотвращает нейрональную гипервозбудимость и последствия эксайтотоксичности [46]. Субъединица А1 образует тетрамерные калий-селективные каналы, через которые ионы калия проходят в соответствии с их электрохимическим градиентом. Канал чередуется между открытой и закрытой конформациями в ответ на разность потенциалов на мембране [47]. Рецепторные комплексы, содержащие различные пропорции субъединиц KCNA1, KCNA2, KCNA4, KCNA5, KCNA6, KCNA7 и цитоплазматических бета-субъединиц, различаются по свойствам результирующих К-каналов, включая скорость открытия и закрытия/инактивации канала [46]. Канал необходим для нормального постнатального развития мозга и нормального деления нейрональных клеток-предшественников в мозге [45].
Серин/треонин-протеинкиназа PAK1 (ген PAK1) – протеинкиназа, участвующая во внутриклеточных сигнальных путях, связанных с интегринами и рецепторными киназами, регулирующими динамику цитоскелета нейронов, клеточную адгезию, миграцию, апоптоз, деление клеток и процессы везикулярного транспорта [48]. PAK1 напрямую фосфорилирует проапоптотический белок BAD и защищает нейроны от апоптоза. Играет роль в регуляции секреции инсулина в ответ на повышенный уровень глюкозы. Тройной комплекс, содержащий белки PAK1, DVL1 и MUSK, важен для регуляции кластеризации АХР во время формирования нервно-мышечных соединений. Сниженная активность фермента ассоциирована с клетками, подвергающимися апоптозу, потенциально из-за связывания CDC2L1 и CDC2L2 [49]. В ответ на повреждение ДНК фосфорилирует MORC2, который активирует его АТФазную активность и способствует ремоделированию хроматина [50]. Фермент необходим для регуляции синаптической стабильности рецептора GABAA и, следовательно, ГАМКергической ингибиторной синаптической передачи благодаря своей роли в стабилизации F-актина. В нейронах гиппокампа он важен для формирования дендритных шипиков и возбуждающих синапсов [51], тем самым играя значимую роль и в нейропластичности.
Серин/треонин-протеинкиназа PINK1 (ген PINK1) – сенсор повреждения митохондрий, способствующий защите клеток от митохондриальной дисфункции во время клеточного стресса в нейронах. Она фосфорилирует митохондриальные белки для координации механизмов контроля качества митохондрий, которые необходимы для поддержания структуры и функции митохондрий [52]. В зависимости от степени повреждения митохондрий активность PINK1 варьируется от предотвращения апоптоза и стимуляции митохондриального биогенеза до устранения сильно поврежденных митохондрий посредством PINK1/PRKN-зависимого каскада сигналов митофагии [53].
Когда клеточный стресс приводит к необратимому повреждению митохондрий, магний-зависимая киназа PINK1 накапливается на внешней митохондриальной мембране, где фосфорилирует уже существующие полиубиквитиновые цепи по Ser-65, активируя белок PRKN, который инициирует митофагию митохондрий с нарушенной структурой [54]. Дополнительно PINK1 регулирует подвижность поврежденных митохондрий, способствуя убиквитинированию и последующей деградации MIRO1 и MIRO2. В двигательных нейронах это ингибирует внутриклеточный антероградный транспорт поврежденных митохондрий вдоль аксонов, что способствует их замене на функциональные митохондрии [55].
Никотинамид/никотинат-нуклеотид аденилилтрансфераза-2 (ген NMNAT2) катализирует образование NAD⁺ из никотинамид-мононуклеотида и АТФ [56]. Действует как фактор выживания аксонов, необходимый для поддержания здоровых аксонов, замедляя дегенерацию аксонов при механических повреждениях [57].
Митоген-активированная протеинкиназа 8 (JNK1, ген MAPK8) участвует в дифференцировке, миграции, трансформации и регуляции апоптоза нейронов. Внеклеточные стимулы, такие как провоспалительные цитокины или физический стресс, стимулируют сигнальный путь стресс-активированной протеинкиназы/c-Jun N-концевой киназы (SAP/JNK) [58]. MAPK8 фосфорилирует STMN2 и, следовательно, регулирует динамику микротрубочек, контролируя удлинение нейритов в корковых нейронах. В развивающемся мозге благодаря своей цитоплазматической активности на STMN2 она отрицательно регулирует скорость выхода из мультиполярной стадии и радиальной миграции из желудочковой зоны. Фосфорилирует SIRT6 как часть ответа нейрона на окислительный стресс [59].
MAP/киназа 4, регулирующая сродство к микротрубочкам (ген MARK4), фосфорилирует ассоциированные с микротрубочками белки MAPT/TAU, MAP2 и MAP4, участвует в регуляции сети микротрубочек нейронов, вызывая реорганизацию микротрубочек в пучки [60]. Она необходима для инициации удлинения аксонемы [61]. Играет роль в прогрессировании цикла деления нейронов, особенно при эмбриогенезе, в энергетическом гомеостазе, регулируя насыщение и скорость метаболизма. Кроме того, MARK4 фосфорилирует белок RPTOR комплекса mTORC1 и действует как негативный регулятор комплекса mTORC1 из-за нарушения взаимодействия между фосфорилированным RPTOR и гетеродимером RRAGA/RRAGC, которое необходимо для активации mTORC1 [62].
Аденилилтрансфераза мононуклеотида никотинамида-2 (ген NMNAT3) катализирует образование NAD⁺ из никотинамидмононуклеотида и АТФ [63]. Участвует в поддержании целостности аксонов, а также функционирует как белок-шаперон стрессового ответа, предотвращающий токсическую агрегацию белков [64].
Полиамин-транспортирующая АТФаза 13A2 (ген ATP13A2) защищает нейроны от токсичности полиаминов (азотистых продуктов жизнедеятельности клеток), стимулируя их всасывание и внутриклеточную переработку. Она играет роль во внутриклеточном катионном гомеостазе и поддержании целостности нейронов [65], в т.ч. через поддержание гомеостаза цинка [66]. ATP13A2 регулирует аутофагию посредством контроля экспрессии киназы SYT11 [67].
Взаимодействия с фармацевтическими препаратами / Interactions with pharmaceuticals
Анализ магний-зависимого сегмента протеома человека показал, что с функцией/активностью магний-зависимых белков ассоциированы 143 лекарственных средства (включая ряд микронутриентов и/или нутрицевтиков). Они формируют весьма широкий круг препаратов из рубрикатора анатомо-терапевтическо-химической (АТХ) классификации, включая:
– анестетики;
– анальгетики (в т.ч. опиоиды) и жаропонижающие средства;
– анксиолитики, снотворные и седативные средства;
– антидепрессанты, антипсихотики;
– препараты, используемые при расстройствах зависимости;
– препараты против деменции и ноотропы;
– блокаторы кальциевых каналов;
– сердечные гликозиды;
– бета-блокаторы;
– антиаритмические средства;
– антитромботические средства;
– противоопухолевые средства;
– противовоспалительные средства (в т.ч. нестероидные);
– препараты, снижающие уровень глюкозы в крови;
– микроэлементы и нутрицевтики;
– противовирусные препараты;
– антибиотики (в т.ч. тетрациклины) и другие противоинфекционные средства.
Отметим, что данный список включает нутрицевтики (глицин, метионин, ресвератрол, ацетилцистеин, циннаризин, кверцетин) и витамины (D, С и витамины группы В – пиридоксин, биотин, тиамин, холин). Примеры конкретных препаратов приведены на рисунке 7.

Рисунок 7. Примеры препаратов, ассоциированных с изменением функции магний- и пиридоксин-зависимых белков (в скобках указаны числа белков):
а – магний-зависимые белки; b – пиридоксин-зависимые белки
Figure 7. Examples of drugs associated with changes in the function of magnesium- and pyridoxine-dependent proteins (protein numbers are given in brackets):
а – magnesium-dependent proteins; b – pyridoxine-dependent proteins
Взаимодействие магний-зависимых белков с указанными группами препаратов разнонаправленно. Некоторые из перечисленных групп лекарственных средств очевидным образом негативно сказываются на гомеостазе магния, приводя к потерям магния организмом (анестетики, блокаторы кальциевых каналов, сердечные гликозиды, антипсихотики, анальгетики, жаропонижающие, противоопухолевые, противовоспалительные, противовирусные препараты, антибиотики и противоинфекционные средства). Детальный анализ антимагниевых свойств всех препаратов рубрикатора АТХ представлен в работе [68].
Магний, воздействуя на рецепторные сигнальные каскады, может улучшать отклик на терапию рядом препаратов, включая анксиолитики, снотворные и седативные средства, препараты против деменции, антиаритмические средства, антидепрессанты, препараты, используемые при расстройствах зависимости, антитромботические средства, бета-блокаторы, препараты, снижающие уровень глюкозы в крови. Нутрицевтики и витамины (включая витамин В6 – пиридоксин) являются физиологическими синергистами магния.
Анализ пиридоксин-зависимого сегмента протеома человека показал, что с функцией/активностью пиридоксин-зависимых белков ассоциирован механизм действия 52 лекарственных препаратов (включая ряд микронутриентов). Некоторые из них ассоциированы и с магний-зависимыми белками: кофеин, ацикловир, амиодарон, а также спиронолактон, арипипразол, атомоксетин, миконазол, топирамат, дазатиниб.
В то же время пиридоксин-зависимые белки в большей степени (судя по количеству белков протеома) ассоциированы с реализацией эффектов тиамина, ресвератрола, циннаризина. Пиридоксин активно выводится вальпроатами, сулиндаком, карведилолом, нифедипином и рядом противоопухолевых препаратов (тамоксифен, доксорубицин, метотрексат), что негативно сказывается на функции всех пиридоксин-зависимых белков.
Заболевания, ассоциированные с нарушениями активности белков / Diseases associated with disturbances in protein activity
Анализ заболеваний, связанных с нарушениями функции магний-зависимых белков протеома человека, указал по крайней мере на 80 различных заболеваний, ассоциированных с дефицитом магния. Очевидно, что к магний-дефицитным патологиям относятся:
– судорожные состояния (судороги мышц и др., спастичность мышц, начало судорожного приступа, контрактуры);
– другие нарушения тонуса мышц (мышечная гипотония, желудочковые аритмии сердца, дыхательная недостаточность (бронхоспазм), спастические нарушения желудочно-кишечного тракта и др.);
– кардиопатологии (гипертрофическая кардиомиопатия, кальцификация артерий);
– неврологические нарушения (дисфункция мозжечка, нарушения неврологического развития плода, миелинизации нервов, зрения, адаптивного поведения, когнитивные расстройства, интеллектуальный дефицит);
– другие нарушения развития плода (дисморфизм головы/лица, скелетные аномалии);
– остеопороз;
– мультисистемные расстройства (в т.ч. связанные с нарушениями структуры соединительной ткани);
– опухолевые заболевания (злокачественные новообразования, аденокарцинома толстого кишечника);
– метаболические расстройства (ожирение, диабет);
– усиление интоксикации организма свинцом;
– формирование камней в почках.
Следует отметить, что результаты настоящего исследования протеома человека подтверждены существенным массивом экспериментальных и клинических данных [1][2].
Анализ заболеваний, ассоциированных с нарушениями функции пиридоксин-зависимых белков протеома человека указал по крайней мере на 45 различных заболеваний, связанных с дефицитом В6. Большинство патологий, ассоциированных с дисфункцией магний-зависимых белков, оказались ассоциированы и с дисфункцией пиридоксин-зависимых белков:
– судороги (спастичность, начало судорожного приступа (повышенная судорожная готовность));
– усиление интоксикации свинцом;
– пороки развития (нарушения неврологического развития плода, дисфункция мозжечка, черепно-лицевой дисморфизм, нарушения миелинизации нервов, скелетные аномалии, нарушения зрения);
– метаболические расстройства;
– камни в почках;
– нарушения желудочно-кишечного тракта;
– гипотония;
– гипертрофическая кардиомиопатия.
Добавим, что с дисфункцией пиридоксин-зависимых белков также были ассоциированы потеря сенсорных ощущений (нарушения тактильной чувствительности), нефрокальциноз, гипогликемия, метаболический ацидоз, нарушения состояния/качества желчи (в т.ч. желчнокаменная болезнь), дефекты/дисплазия клапанов и перегородок сердца, задержка роста плода, психомоторные аномалии плода.
Практическое применение Магне В6® в неврологии / Practical applications of Magne B6® in neurology
Представленные выше результаты протеомного анализа магний- и пиридоксин-зависимых белков подтверждаются результатами фундаментальных и клинических исследований. Отметим, что препарат Магне В6® характеризуется наиболее детальной и обоснованной доказательной базой, включая метаанализы [1]. По нему проведен комплекс клинических исследований, показавших перспективность его использования в детской и взрослой неврологии.
Прежде всего следует отметить положительное влияние терапии Магне В6® на женское здоровье и течение беременности (что, безусловно, важно для поддержки неврологического состояния плода и ребенка). Препарат успешно используется в коррекции психовегетативных расстройств у женщин [69]. Показана эффективность профилактического применения Магне В6® у беременных с артериальной гипертонией и ожирением, страдающих невынашиванием [70]. Прием препарата беременными с признаками дисплазии соединительной ткани (n=500) положительно сказывался на течении беременности, способствуя родоразрешению в срок, предотвращая прерывание беременности и формирование преэклампсии второй половины беременности, а также был сопряжен с профилактикой асфиксии и гипотрофии новорожденного, приводящей к неврологическим нарушениям [71].
Наиболее изученными направлениями применения препарата Магне В6® в детской неврологии являются терапия у детей с синдромом дефицита внимания (СДВ) и синдромом дефицита внимания с гиперактивностью (СДВГ), лечение астении и противодействие стрессу. В лечении СДВ/СДВГ используются немедикаментозные (Монтессори-терапия, оперантный тренинг родительской компетентности, групповая психотерапия, тренинг социальных навыков, транскраниальная микрополяризация, биологическая обратная связь и др.) и медикаментозные методы, одним из которых служит прием препаратов магния. Недостаточная обеспеченность магнием создает условия для кумуляции свинца в организме человека. Хорошо известно, что клинические признаки отравления свинцом у детей схожи с проявлениями СДВ/СДВГ.
Показано, что структура отклонений элементного спектра и гиповитаминозы у детей с СДВГ имеют характерные особенности, из которых наиболее распространена и ярко выражена недостаточная обеспеченность и магнием, и пиридоксином [72][73]. Эффективность применения Магне В6® у детей с СДВ/СДВГ подтверждена комплексным клинико-нейропсихологическим и биохимическим обследованием данной категории пациентов [74].
Установлено влияние препарата Магне В6® на цереброваскулярную реактивность у детей с СДВ [75]. Анализ содержания магния в волосах у 96 детей 3–10 лет с СДВГ (54 мальчика и 46 девочек) показал наличие у всех обследованных полиэлементных отклонений состава волос (до 12 различных химических элементов). Во всех случаях дефицит магния сочетался с дефицитом эссенциальных и избытком нейротоксичных элементов (в частности, свинца). Для оценки церебральной гемодинамики проводилась ультразвуковая транскраниальная допплерография. Начиная с 4-кратного отклонения магния от нормы у подавляющего большинства детей отмечались нарушения цереброваскулярной реактивности по гиперконстрикторному типу. Все дети, у которых была выявлена низкая концентрация магния в волосах, получали Магне В6® ежедневно (10 мг/кг/сут) в течение 2 мес. Препарат хорошо переносился всеми пациентами. Применение Магне В6® у детей с СДВГ на фоне недостаточной обеспеченности магнием приводило к позитивной модификации поведения, цереброваскулярной реактивности, что является доказательством вазоактивного воздействия препарата. В результате лечения у всех 70 детей, получавших в течение 2 мес терапию магнием, наблюдалась положительная клиническая динамика СДВГ [76].
Применение препарата Магне В6® для лечения астенических состояний и расстройств ночного сна у детей в возрасте 9–17 лет (n=154) курсом 1–2 мес продемонстрировало, что на фоне терапии происходила нормализация всех показателей по тесту САН (самочувствие, активность, настроение). Концентрация 6-сульфатоксимелатонина в моче имела тенденцию к повышению у всех пациентов, что указывает на нормализацию метаболизма мелатонина («гормона сна»). В целом прием Магне В6® позволил купировать астенический синдром и магниевый дефицит при астении, улучшить самочувствие, активность и настроение детей на фоне нормализации содержания магния в организме, нормализовать ночной сон у 74,1% пациентов с инсомнией [77].
В ходе изучения клинической эффективности 30-дневного курса Магне В6® для коррекции психоэмоциального статуса школьников в период интенсивного обучения (14–17 лет, n=30) наблюдалась положительная динамика самочувствия, активности, настроения, показателей вегетативной и сердечно-сосудистой систем у 97% обследованных. У 50% установлено достоверное повышение уровня адаптации. Показана хорошая переносимость и отсутствие побочных эффектов препарата [78]. Результаты рандомизированного исследования антистрессорных и антидепрессантных эффектов препарата Магне В6®, применяемого у добровольцев 18–23 лет (n=89) в течение 8 нед, продемонстрировали достоверное уменьшение симптоматики дефицитов магния и пиридоксина и, как следствие, выраженности стрессовых реакций, а также достижение лучших результатов в учебе [79].
Магне В6® может являться эффективным способом коррекции психоэмоционального статуса при прохождении той или иной фармакотерапии неврологического характера. Например, назначение препарата пациентам с различными формами эпилепсии (n=25) в течение 4 нед на фоне терапии антисудорожными средствами способствовало улучшению их самочувствия. Во всех случаях психический статус больных характеризовался наличием депрессии и тревожности. Препарат применялся в средней терапевтической дозе в течение 28 дней. Оценки по шкале Занга для самооценки тревоги (англ. Zung Anxiety Rating Scale, ZARS), методике симптоматического опросника (англ. Symptom Checklist-90, SCL-90) и шкале общего клинического впечатления (англ. Clinical Global Impression, CGI) показали достоверное положительное неспецифическое действие Магне В6® на психическое состояние пациентов, наиболее выраженное в отношении аффективных расстройств к 28-му дню. Более эффективным препарат был при церебрастеническом и субдепрессивном синдромах, эффективность оказалась меньше при энцефалопатическом синдроме. Магне В6® хорошо переносился и не вызывал каких-либо побочных явлений [80].
В целом в работе детально описаны механизмы воздействия магния на нейрофизиологию человека и синергизма между магнием и пиридоксином на уровне протеома человека (рис. 8).

Рисунок 8. Молекулярные и клинические аспекты протеомного синергизма магния (Mg) и пиридоксина (В6).
АТФ – аденозинтрифосфат; LRRK2 (англ. leucine-rich repeat kinase 2) – обогащенная лейциновыми повторами киназа-2; NMDA3A (англ. N-methyl-D‑aspartate 3A) – N-метил-D‑аспартат 3А; COMT (англ. сatechol-O-methyltransferase) – катехол-О-метилтрансфераза; SNCA (англ. synuclein alpha) – альфа-синуклеин; СДВГ – синдром дефицита внимания и гиперактивности; ХИМ – хроническая ишемия мозга
Figure 8. Molecular and clinical aspects of proteomic synergism of magnesium (Mg) and pyridoxine (В6).
ATP – adenosine triphosphate; LRRK2 – leucine-rich repeat kinase 2; NMDA3A – N-methyl-D‑aspartate 3A; COMT – сatechol-O-methyltransferase; SNCA – synuclein alpha; ADHD – attention deficit hyperactivity disorder; CCI – chronic cerebral ischemia
ЗАКЛЮЧЕНИЕ / CONCLUSION
Молекулярные механизмы фармакологического действия, а также фармакодинамические характеристики препаратов линии Магне В6® (Sanofi, Франция) основаны на магний- и пиридоксин зависимых белках протеома человека (особенно тех, в которые магний и пиридоксаль-5-фосфат входят как коферменты).
Заметим, что в течение последних 30 лет в разных публикациях по фармакологии магниевых препаратов (причем из разных стран) можно встретить фразу (очевидно, копируемую из статьи в статью без всякого критического рассуждения), что «биологические функции магния реализуются посредством 300 ферментов». Действительно, в белковых базах данных начала 1990-х гг. можно было найти всего две-три сотни магний-связывающих белков. Однако за 30–35 лет массив информации о магний-связывающих белках (и, заметим, о пиридоксин-зависимых белках) был существенно пополнен новыми данными. В настоящее время таких белков насчитывается более 1000, а вовсе не 300.
В настоящем исследовании проведен системно-биологический анализ синергизма магний- и пиридоксин-зависимых белков в контексте поддержки жизнедеятельности нервной системы. Анализ выполнен с использованием современных математических методов топологической теории распознавания. Выявлены все возможные магний-зависимые (n=1020) и пиридоксин-зависимые (n=99) белки, отобраны участвующие в функционировании нервной системы, поддержке настроения и эмоциональной сферы. Среди различных тканей именно головной мозг характеризуется наибольшим разнообразием магний-зависимых белков (n=244). Синергизм между магнием и пиридоксином проявляется на многих уровнях: взаимодействия с различными белковыми кофакторами, общие функциональные категории белков, схожие взаимодействия с рядом фармацевтических препаратов и сопоставимые ассоциации дефицитов магния/пиридоксина с различными заболеваниями. Многие пиридоксин-зависимые белки взаимодействуют с теми же кофакторами, что и магний-зависимые. Пиридоксин-зависимые белки относились в основном к тем же наиболее часто встречающимся функциональным категориям, что и магний-зависимые, что указывает на очевидный синергизм магния и пиридоксина в поддержании фундаментальных физиологических процессов. В реализации нейропротекторных, нейротрофических и других нейротропных эффектов иона магния участвуют по крайней мере 172 магний-зависимых белка протеома человека и 20 пиридоксин-зависимых белков. И магний-, и пиридоксин-зависимые белки важны для поддержания гомеостаза нейротрансмиттеров, нейропластичности и выживания нейронов.
С функцией/активностью магний-зависимых белков ассоциированы 143 лекарственных препарата (включая ряд микронутриентов и/или нутрицевтиков) – анестетики, анксиолитики, снотворные/седативные средства, препараты для лечения деменции, блокаторы кальциевых каналов, сердечные гликозиды, антиаритмические средства и другие кардиопрепараты, антидепрессанты, антипсихотики, антибиотики, диуретики и др. Анализ заболеваний, ассоциированных с нарушениями функции магний-зависимых белков протеома человека, указал на 80 различных патологий, связанных с дефицитом магния (судорожные состояния, нарушения неврологического развития плода, миелинизации нервов, зрения, адаптивного поведения, когнитивные нарушения и интеллектуальный дефицит). Большинство заболеваний, ассоциированных с дисфункцией магний-зависимых белков, ассоциированы и с дисфункцией пиридоксин-зависимых белков.
Список литературы
1. Громова О.А., Торшин И.Ю. Магний и «болезни цивилизации». М.: ГЭОТАР-Медиа; 2018: 800 с.
2. Громова О.А., Торшин И.Ю. Микронутриенты в неврологии. Руководство. М.: ГЕОТАР-Медиа; 2026: 984 с.
3. Torshin I.Yu. On solvability, regularity, and locality of the problem of genome annotation. Pattern Recognit Image Anal. 2010; 20: 386–95. https://doi.org/10.1134/S1054661810030156.
4. Рудаков К.В., Торшин И.Ю. Анализ информативности мотивов на основе критерия разрешимости в задаче распознавания вторичной структуры белка. Информатика и ее применения. 2012; 6 (1): 79–90.
5. Torshin I.Yu. The study of the solvability of the genome annotation problem on sets of elementary motifs. Pattern Recognit Image Anal. 2011; 21: 652–62. https://doi.org/10.1134/S1054661811040171.
6. Torshin I.Yu. Sensing the change from molecular genetics to personalized medicine. Nova Science Pub Inc.; 2012: 366 pp.
7. UniProt Consortium. UniProt: the Universal Protein Knowledgebase in 2023. Nucleic Acids Res. 2023; 51 (D1): D523–31. https://doi.org/10.1093/nar/gkac1052.
8. Griss J., Viteri G., Sidiropoulos K., et al. ReactomeGSA – efficient multi-omics comparative pathway analysis. Mol Cell Proteomics. 2020; 19 (12): 2115–25. https://doi.org/10.1074/mcp.TIR120.002155.
9. Ashburner M., Ball C.A., Blake J.A., et al. Gene ontology: tool for the unification of biology. The Gene Ontology Consortium. Nat Genet. 2000; 25 (1): 25–9. https://doi.org/10.1038/75556.
10. Kim M.S., Pinto S., Getnet D., et al. A draft map of the human proteome. Nature. 2014; 509 (7502): 575–81. https://doi.org/10.1038/nature13302.
11. Endele S., Rosenberger G., Geider K., et al. Mutations in GRIN2A and GRIN2B encoding regulatory subunits of NMDA receptors cause variable neurodevelopmental phenotypes. Nat Genet. 2010; 42 (11): 1021–6. https://doi.org/10.1038/ng.677.
12. Carvill G.L., Regan B.M., Yendle S.C., et al. GRIN2A mutations cause epilepsy-aphasia spectrum disorders. Nat Genet. 2013; 45 (9): 1073–6. https://doi.org/10.1038/ng.2727.
13. Gao K., Tankovic A., Zhang Y., et al. A de novo loss-of-function GRIN2A mutation associated with childhood focal epilepsy and acquired epileptic aphasia. PLoS One. 2017; 12 (2): e0170818. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0170818.
14. Nicke B., Bastien J., Khanna S.J., et al. Involvement of MINK, a Ste20 family kinase, in Ras oncogene-induced growth arrest in human ovarian surface epithelial cells. Mol Cell. 2005; 20 (5): 673–85. https://doi.org/10.11016/j.molcel.2005.10.038.
15. Meng Z., Moroishi T., Mottier-Pavie V., et al. MAP4K family kinases act in parallel to MST1/2 to activate LATS1/2 in the Hippo pathway. Nat Commun. 2015; 6: 8357. https://doi.org/10.1038/ncomms9357.
16. Asch R.H., Holmes S.E., Jastreboff A.M., et al. Lower synaptic density is associated with psychiatric and cognitive alterations in obesity. Neuropsychopharmacology. 2022; 47 (2): 543–52. https://doi.org/10.1038/s41386-021-01111-5.
17. Whyte A., Jessen T., Varney S., Carneiro A.M. Serotonin transporter and integrin beta 3 genes interact to modulate serotonin uptake in mouse brain. Neurochem Int. 2014; 73: 122–6. https://doi.org/10.1016/j.neuint.2013.09.014.
18. Beliveau V., Ganz M., Feng L., et al. A high-resolution in vivo atlas of the human brain's serotonin system. J Neurosci. 2017; 37 (1): 120–8. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.2830-16.2016.
19. Giamas G., Filipović A., Jacob J., et al. Kinome screening for regulators of the estrogen receptor identifies LMTK3 as a new therapeutic target in breast cancer. Nat Med. 2011; 17 (6): 715–9. https://doi.org/10.1038/nm.2351.
20. Dawling S., Roodi N., Mernaugh R.L., et al. Catechol-O-methyltransferase (COMT)-mediated metabolism of catechol estrogens: comparison of wild-type and variant COMT isoforms. Cancer Res. 2001; 61 (18): 6716–22.
21. Peng H., Ferris R.L., Matthews T., et al. Characterization of the human nicotinic acetylcholine receptor subunit alpha (α) 9 (CHRNA9) and alpha (α) 10 (CHRNA10) in lymphocytes. Life Sci. 2004; 76 (3): 263–80. https://doi.org/10.1016/j.lfs.2004.05.031.
22. Yan L., Herrington J., Goldberg E., et al. Stichodactyla helianthus peptide, a pharmacological tool for studying Kv3.2 channels. Mol Pharmacol. 2005; 67 (5): 1513–21. https://doi.org/10.1124/mol.105.011064.
23. Niesler B., Walstab J., Combrink S., et al. Characterization of the novel human serotonin receptor subunits 5-HT3C,5-HT3D, and 5-HT3E. Mol Pharmacol. 2007; 72 (1): 8–17. https://doi.org/10.1124/mol.106.032144.
24. Li M., Wang Y., Banerjee R., et al. Molecular mechanisms of human P2X3 receptor channel activation and modulation by divalent cation bound ATP. Elife. 2019; 8: e47060. https://doi.org/10.7554/eLife.47060.
25. Logan T., Bendor J., Toupin C., et al. α-Synuclein promotes dilation of the exocytotic fusion pore. Nat Neurosci. 2017; 20 (5): 681–9. https://doi.org/10.1038/nn.4529.
26. Sellier C., Campanari M.L., Julie Corbier C., et al. Loss of C9ORF72 impairs autophagy and synergizes with polyQ Ataxin-2 to induce motor neuron dysfunction and cell death. EMBO J. 2016; 35 (12): 1276–97. https://doi.org/10.15252/embj.201593350.
27. Zach S., Felk S., Gillardon F. Signal transduction protein array analysis links LRRK2 to Ste20 kinases and PKC zeta that modulate neuronal plasticity. PLoS One. 2010; 5 (10): e13191. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0013191.
28. Steger M., Diez F., Dhekne H.S., et al. Systematic proteomic analysis of LRRK2-mediated Rab GTPase phosphorylation establishes a connection to ciliogenesis. Elife. 2017; 6: e31012. https://doi.org/10.7554/eLife.31012.
29. MacLeod D., Dowman J., Hammond R., et al. The familial Parkinsonism gene LRRK2 regulates neurite process morphology. Neuron. 2006; 52 (4): 587–93. https://doi.org/10.1016/j.neuron.2006.10.008.
30. Gómez-Suaga P., Luzón-Toro B., Churamani D., et al. Leucine-rich repeat kinase 2 regulates autophagy through a calcium-dependent pathway involving NAADP. Hum Mol Genet. 2012; 21 (3): 511–25. https://doi.org/10.1093/hmg/ddr481.
31. Boyle L., Rao L., Kaur S., et al. Genotype and defects in microtubule-based motility correlate with clinical severity in KIF1A-associated neurological disorder. HGG Adv. 2021; 2 (2): 100026. https://doi.org/10.1016/j.xhgg.2021.100026.
32. Lizcano J.M., Göransson O., Toth R., et al. LKB1 is a master kinase that activates 13 kinases of the AMPK subfamily, including MARK/PAR-1. EMBO J. 2004; 23 (4): 833–43. https://doi.org/10.1038/sj.emboj.7600110.
33. de Jong S.J., Créquer A., Matos I., et al. The human CIB1-EVER1-EVER2 complex governs keratinocyte-intrinsic immunity to β-papillomaviruses. J Exp Med. 2018; 215 (9): 2289–310. https://doi.org/10.1084/jem.20170308.
34. Wu C.J., Li X., Sommers C.L., Kurima K., et al. Expression of a TMC6-TMC8-CIB1 heterotrimeric complex in lymphocytes is regulated by each of the components. J Biol Chem. 2020; 295 (47): 16086–99. https://doi.org/10.1074/jbc.RA120.013045.
35. Tripathy R., Leca I., van Dijk T., et al. Mutations in MAST1 cause mega-corpus-callosum syndrome with cerebellar hypoplasia and cortical malformations. Neuron. 2018; 100 (6): 1354–68.e5. https://doi.org/10.1016/j.neuron.2018.10.044.
36. Santra M.K., Wajapeyee N., Green M.R. F-box protein FBXO31 mediates cyclin D1 degradation to induce G1 arrest after DNA damage. Nature. 2009; 459 (7247): 722–5. https://doi.org/10.1038/nature08011.
37. Lotan R., Rotem A., Gonen H., et al. Regulation of the proapoptotic ARTS protein by ubiquitin-mediated degradation. J Biol Chem. 2005; 280 (27): 25802–10. https://doi.org/10.1074/jbc.M501955200.
38. Bainbridge T.W., DeAlmeida V.I., Izrael-Tomasevic A., et al. Evolutionary divergence in the catalytic activity of the CAM-1, ROR1 and ROR2 kinase domains. PLoS One. 2014; 9 (7): e102695. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0102695.
39. Chen X.Y., Gu X.T., Saiyin H., et al. Brain-selective kinase 2 (BRSK2) phosphorylation on PCTAIRE1 negatively regulates glucose-stimulated insulin secretion in pancreatic β-cells. J Biol Chem. 2012; 287 (36): 30368–75. https://doi.org/10.1074/jbc.M112.375618.
40. Li R., Wan B., Zhou J., et al. APC/C(Cdh1) targets brain-specific kinase 2 (BRSK2) for degradation via the ubiquitin-proteasome pathway. PLoS One. 2012; 7 (9): e45932. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0045932.
41. Petris M.J., Strausak D., Mercer J.F. The Menkes copper transporter is required for the activation of tyrosinase. Hum Mol Genet. 2000; 9 (19): 2845–51. https://doi.org/10.1093/hmg/9.19.2845.
42. Skjørringe T., Amstrup Pedersen P., Salling Thorborg S., et al. Characterization of ATP7A missense mutants suggests a correlation between intracellular trafficking and severity of Menkes disease. Sci Rep. 2017; 7 (1): 757. https://doi.org/10.1038/s41598-017-00618-6.
43. Lasorsa A., Nardella M.I., Rosato A., et al. Mechanistic and structural basis for inhibition of copper trafficking by platinum anticancer drugs. J Am Chem Soc. 2019; 141 (30): 12109–20. https://doi.org/10.1021/jacs.9b05550.
44. Gu J.J., Lavau C.P., Pugacheva E., et al. Abl family kinases modulate T cell-mediated inflammation and chemokine-induced migration through the adaptor HEF1 and the GTPase Rap1. Sci Signal. 2012; 5 (233): ra51. https://doi.org/10.1126/scisignal.2002632.
45. van der Wijst J., Glaudemans B., Venselaar H., et al. Functional analysis of the Kv1.1 N255D mutation associated with autosomal dominant hypomagnesemia. J Biol Chem. 2010; 285 (1): 171–8. https://doi.org/10.1074/jbc.M109.041517.
46. Imbrici P., D'Adamo M.C., Kullmann D.M., Pessia M. Episodic ataxia type 1 mutations in the KCNA1 gene impair the fast inactivation properties of the human potassium channels Kv1.4-1.1/Kvbeta1.1 and Kv1.4-1.1/Kvbeta1.2. Eur J Neurosci. 2006; 24 (11): 3073–83. https://doi.org/10.1111/j.1460-9568.2006.05186.x.
47. Ramaswami M., Gautam M., Kamb A., et al. Human potassium channel genes: molecular cloning and functional expression. Mol Cell Neurosci. 1990; 1 (3): 214–23. https://doi.org/10.1016/1044-7431(90)90004-n.
48. Slack-Davis J.K., Eblen S.T., Zecevic M., et al. PAK1 phosphorylation of MEK1 regulates fibronectin-stimulated MAPK activation. J Cell Biol. 2003; 162 (2): 281–91. https://doi.org/10.1083/jcb.200212141.
49. Chen S., Yin X., Zhu X., et al. The C-terminal kinase domain of the p34cdc2-related PITSLRE protein kinase (p110C) associates with p21-activated kinase 1 and inhibits its activity during anoikis. J Biol Chem. 2003; 278 (22): 20029–36. https://doi.org/10.1074/jbc.M300818200.
50. Li D.Q., Nair S.S., Ohshiro K., et al. MORC2 signaling integrates phosphorylation-dependent, ATPase-coupled chromatin remodeling during the DNA damage response. Cell Rep. 2012; 2 (6): 1657–69. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2012.11.018.
51. Sells M.A., Knaus U.G., Bagrodia S., et al. Human p21-activated kinase (Pak1) regulates actin organization in mammalian cells. Curr Biol. 1997; 7 (3): 202–10. https://doi.org/10.1016/s0960-9822(97)70091-5.
52. Koyano F., Okatsu K., Kosako H., et al. Ubiquitin is phosphorylated by PINK1 to activate parkin. Nature. 2014; 510 (7503): 162–6. https://doi.org/10.1038/nature13392.
53. Valente E.M., Abou-Sleiman P.M., Caputo V., et al. Hereditary early-onset Parkinson's disease caused by mutations in PINK1. Science. 2004; 304 (5674): 1158–60. https://doi.org/10.1126/science.1096284.
54. Schulz L.O., Nyomba B.L., Alger S., et al. Effect of endurance training on sedentary energy expenditure measured in a respiratory chamber. Am J Physiol. 1991; 260 (2 Pt 1): E257–61. https://doi.org/10.1152/ajpendo.1991.260.2.E257.
55. Liu S., Sawada T., Lee S., et al. Parkinson's disease-associated kinase PINK1 regulates Miro protein level and axonal transport of mitochondria. PLoS Genet. 2012; 8 (3): e1002537. https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1002537.
56. Sorci L., Cimadamore F., Scotti S., et al. Initial-rate kinetics of human NMN-adenylyltransferases: substrate and metal ion specificity, inhibition by products and multisubstrate analogues, and isozyme contributions to NAD+ biosynthesis. Biochemistry. 2007; 46 (16): 4912–22. https://doi.org/10.1021/bi6023379.
57. Challa S., Khulpateea B.R., Nandu T., et al. Ribosome ADP-ribosylation inhibits translation and maintains proteostasis in cancers. Cell. 2021; 184 (17): 4531–46.e26. https://doi.org/10.1016/j.cell.2021.07.005.
58. Song N., Liu Z.S., Xue W., et al. NLRP3 phosphorylation is an essential priming event for inflammasome activation. Mol Cell. 2017; 68 (1): 185–97.e6. https://doi.org/10.1016/j.molcel.2017.08.017.
59. Van Meter M., Simon M., Tombline G., et al. JNK phosphorylates SIRT6 to stimulate DNA double-strand break repair in response to oxidative stress by recruiting PARP1 to DNA breaks. Cell Rep. 2016; 16 (10): 2641–50. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2016.08.006.
60. Rovina D., Fontana L., Monti L., et al. Microtubule-associated protein/microtubule affinity-regulating kinase 4 (MARK4) plays a role in cell cycle progression and cytoskeletal dynamics. Eur J Cell Biol. 2014; 93 (8–9): 355–65. https://doi.org/10.1016/j.ejcb.2014.07.004.
61. Kuhns S., Schmidt K.N., Reymann J., et al. The microtubule affinity regulating kinase MARK4 promotes axoneme extension during early ciliogenesis. J Cell Biol. 2013; 200 (4): 505–22. https://doi.org/10.1083/jcb.201206013.
62. Li L., Guan K.L. Microtubule-associated protein/microtubule affinity-regulating kinase 4 (MARK4) is a negative regulator of the mammalian target of rapamycin complex 1 (mTORC1). J Biol Chem. 2013; 288 (1): 703–8. https://doi.org/10.1074/jbc.C112.396903.
63. Ruan K., Zhu Y., Li C., et al. Alternative splicing of Drosophila Nmnat functions as a switch to enhance neuroprotection under stress. Nat Commun. 2015; 6: 10057. https://doi.org/10.1038/ncomms10057.
64. Zhai R.G., Zhang F., Hiesinger P.R., et al. NAD synthase NMNAT acts as a chaperone to protect against neurodegeneration. Nature. 2008; 452 (7189): 887–91. https://doi.org/10.1038/nature06721.
65. Ramonet D., Podhajska A., Stafa K., et al. PARK9-associated ATP13A2 localizes to intracellular acidic vesicles and regulates cation homeostasis and neuronal integrity. Hum Mol Genet. 2012; 21 (8): 1725–43. https://doi.org/10.1093/hmg/ddr606.
66. Kong S.M., Chan B.K., Park J.S., et al. Parkinson's disease-linked human PARK9/ATP13A2 maintains zinc homeostasis and promotes α-Synuclein externalization via exosomes. Hum Mol Genet. 2014; 23 (11): 2816–33. https://doi.org/10.1093/hmg/ddu099.
67. Bento C.F., Ashkenazi A., Jimenez-Sanchez M., Rubinsztein D.C. The Parkinson's disease-associated genes ATP13A2 and SYT11 regulate autophagy via a common pathway. Nat Commun. 2016; 7: 11803. https://doi.org/10.1038/ncomms11803.
68. Торшин И.Ю., Калачева А.Г., Громова О.А., Рогозин М.А. Оценка препаратов рубрикатора АТХ методом хемореактомного скрининга для профилактики дефицитов магния и пиридоксина. Фармакокинетика и фармакодинамика. 2025; 3: 21–9. https://doi.org/10.37489/2587-7836-2025-3-21-29.
69. Сметник В.П., Бутарева Л.Б. Место Магне В6 в коррекции психовегетативных расстройств у женщин с климактерическим синдромом в постменопаузе. Фарматека. 2004; 15: 1–4.
70. Кошелева Н.Г., Никологорская Е.В. Профилактическое применение Магне-В6 у беременных женщин с артериальной гипертонией и ожирением, страдающих невынашиванием беременности. Гинекология. 2010; 12 (3): 35–8.
71. Грачева О.Н. Анализ взаимосвязей приема препарата Магне-В6; с течением беременности и состоянием плода у женщин с дисморфизмом соединительной ткани. Аспирантский вестник Поволжья. 2012; 5–6: 152–5.
72. Скоромец А., Андрющенко Н., Семичева И., Шигашов Д. Синдром дефицита внимания с гиперактивностью: подходы к диагностике и лечению. Врач. 2011; 1: 9–13.
73. Громова О.А., Авдееенко Т.В., Бурцев Е.М. и др. Дефицит магния в контексте концепции элементарного гомеостаза у детей с минимальной мозговой дисфункцией и его коррекция препаратом Магне-В6. Клиническая фармакология и терапия. 1998; 7 (3): 52–8.
74. Ноговицина О.Р. Изучение эффективности применения Магне В6 в лечении детей с синдромом дефицита внимания с гиперактивностью. Медицинская наука и образование Урала. 2006; 7 (4): 66–9.
75. Громова О.А., Андреев А.В., Скальный А.В. и др. Влияние препарата Магне В6 на цереброваскулярную реактивность у детей с синдромом дефицита внимания. Клиническая фармакология и терапия. 2000; 9 (5): 31–4.
76. Федотова Л.Э., Краснощекова Л.И., Громова О.А. и др. Дефицит магния у детей с минимальной мозговой дисфункцией и его коррекция препаратом Магне-В6. Вестник Ивановской медицинской академии. 2005; 10 (1-2): 91.
77. Марушко Ю.В., Гищак Т.В. Эффективность применения Магне-В6 при астеническом синдроме и нарушениях ночного сна у детей. Современная педиатрия. 2013; 5: 37.
78. Нагорная Н.В., Бордюгова Е.В., Четверик Н.А. и др. Эффективность препарата Магне-В6 форте в коррекции психоэмоцинального статуса школьников в период интенсивного обучения. Современная педиатрия. 2011; 4: 53.
79. Калачева А.Г., Сатарина Т.Е., Гришина Т.Р. и др. Изучение антистрессорной и мнестической эффективности витаминно-минерального комплекса Магне-В6 у студентов-медиков. Вестник Ивановской медицинской академии. 2009; 14 (1): 17–22.
80. Калинин В.В., Железнова Е.В., Рогачева Т.А. и др. Применение препарата Магне-В6 для лечения тревожно-депрессивных состояний у больных эпилепсией. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2004; 104 (8): 51–5.
Об авторах
И. Ю. ТоршинРоссия
Торшин Иван Юрьевич, к.ф-м.н., к.х.н.
WoS ResearcherID: C-7683-2018. Scopus Author ID: 7003300274
ул. Вавилова, д. 44, корп. 2, Москва 119333
О. А. Громова
Россия
Громова Ольга Алексеевна, д.м.н., проф.
WoS ResearcherID: J-4946-2017. Scopus Author ID: 7003589812
ул. Вавилова, д. 44, корп. 2, Москва 119333
М. А. Рогозин
Россия
Рогозин Михаил Александрович
Шереметевский пр-т, д. 8, Иваново 153012
А. Н. Громов
Россия
Громов Андрей Николаевич
WoS ResearcherID: C-7476-2018. Scopus Author ID: 7102053964
ул. Вавилова, д. 44, корп. 2, Москва 119333
Что уже известно об этой теме?
► Магний и пиридоксин являются ключевыми кофакторами для множества белков протеома человека, в т.ч. отвечающих за электролитный обмен, ритм сердца, регуляцию сосудистого тонуса, нейротрансмиттерный баланс, нейропластичность и выживание нейронов
► Синергистом нейропротекторных, противосудорожных, токолитических эффектов магния является пиридоксин
► Клинические исследования оригинального препарата Магне В6® продемонстрировали его нейропротекторные и нормотимические эффекты в неврологии и нейропедиатрии, особенно при состояниях, связанных с дефицитом магния
Что нового дает статья?
► В процессе работы с базами данных протеома (NCBI Protein, UniProt, Human Proteome Map) впервые сформирован актуальный список магний- (n=1020) и пиридоксин-зависимых (n=99) белков человека с выделением категорий функциональной активности организма. Подробно рассмотрено подмножество критически важных белков для функционирования нервной системы
► Показано, что 172 магний-зависимых и 20 пиридоксин-зависимых белков опосредуют нейропротекторные эффекты магния, обеспечивая молекулярно-фармакологическое обоснование его клинического применения в неврологии на фоне недостаточной обеспеченности магнием человека с водой и пищей, при повышенных потребностях в магнии (физические и психоэмоциональные перегрузки, прием диуретиков, кофеина, алкоголя, пересоленной пищи)
► Системно-биологический анализ взаимодействий этих белков с 143 лекарственными препаратами и ассоциированными заболеваниями раскрывает новые уровни синергизма магния и пиридоксина и их фармакологических взаимодействий
Как это может повлиять на клиническую практику в обозримом будущем?
► Подробное картирование магний- и пиридоксин-зависимых белков нервной системы указывает на необходимость внедрения в широкую врачебную практику определения уровня магния по опросникам диет, анализу концентрации магния в биосубстратах. Это позволит точнее отбирать пациентов с соответствующими диагнозами, а также обосновывать критическую необходимость назначения Магне В6® при неврологических и психоэмоциональных нарушениях
► Идентификация 143 препаратов, влияющих на магний-зависимые белки, задает основу для учета лекарственных взаимодействий и оптимизации схем терапии, включая комбинирование Магне В6® с психо- и нейротропными средствами
► Связь дисфункции магний-зависимых белков с по крайней мере 80 заболеваниями позволяет интегрировать терапию препаратом Магне В6® в стратегии профилактики и реабилитации при широком спектре неврологических и когнитивных расстройств
Рецензия
Для цитирования:
Торшин И.Ю., Громова О.А., Рогозин М.А., Громов А.Н. Системно-биологический анализ синергизма магний- и пиридоксин-зависимых белков в контексте поддержки жизнедеятельности нервной системы. ФАРМАКОЭКОНОМИКА. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология. 2026;1(19):133-156. https://doi.org/10.17749/2070-4909/farmakoekonomika.2026.361
For citation:
Torshin I.Yu., Gromova O.A., Rogozin M.A., Gromov A.N. Synergism of magnesium- and pyridoxine-dependent proteins in nervous system support: systems biological analysis. FARMAKOEKONOMIKA. Modern Pharmacoeconomics and Pharmacoepidemiology. 2026;1(19):133-156. (In Russ.) https://doi.org/10.17749/2070-4909/farmakoekonomika.2026.361
JATS XML

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.































