Воздействие комбинации метанольного экстракта Scurrula atropurpurea (Blume) и Dendrophthoe pentandra на функцию и структуру печени у крыс

Актуальность. Омела чайная (Scurrula atropurpurea (Blume)) и омела манго (Dendrophthoe pentandra) известны как потенциальные лекарственные средства от ряда заболеваний.

Цель: изучить эффект комбинации метанольного экстракта Scurrula atropurpurea (Blume) и Dendrophthoe pentandra (MESA-DP) на функцию и структуру печени у крыс с помощью серологического и гистопатологического анализа.

Материал и методы. Исследование проводилось в течение 28 дней с использованием 20 крыс, разделенных на четыре группы: 1-я группа служила контролем, а крысы во 2-й, 3-й и 4-й группах получали MESA-DP в дозах 250, 500 и 1000 мг/кг массы тела соответственно. Гистопатологическую структуру печени наблюдали с помощью окрашивания гематоксилином и эозином. Функцию печени оценивали по сывороточным уровням общего билирубина, глутамат-щавелевоуксусной трансаминазы (ГЩТ), глутамин-пировиноградной трансаминазы (ГПТ), общего белка, альбумина, глобулина, холестерина, триглицеридов, липопротеинов высокой плотности (ЛПВП) и липопротеинов низкой плотности (ЛПНП). Данные проанализированы с использованием однофакторного анализа ANOVA (англ. ANalysis Of VAriance) и программы SPSS Statistics 17.0 (IBM, США).

Результаты. Введение MESA-DP при всех дозах не привело к достоверным различиям в функции печени у крыс по показателям общего билирубина, ГЩТ, ГПТ, альбумина, холестерина и триглицеридов (p>0,05), в то время как уровни глобулина, общего белка, ЛПВП и ЛПНП показали значимые различия (р<0,05). Изучение гистопатологической структуры печени продемонстрировало повышенное количество пикнотических, кариоректических и кариолитических клеток у крыс, получавших MESA-DP, по сравнению с контролем, которое росло с увеличением дозы.

Заключение. Функция печени после воздействия MESA-DP у крыс не изменилась по показателям общего билирубина, ГЩТ, ГПТ, альбумина, холестерина и триглицеридов. Однако применение MESA-DP привело к увеличению количества некротических клеток печени. Таким образом, оно может оказывать положительный эффект на печень подопытных животных с учетом правильного дозирования.

1. Lim Y.C., Rajabalaya R., Lee S.H., et al. Parasitic mistletoes of the Genera Scurrula and Viscum: from bench to bedside. Molecules. 2016; 21 (8): 1048. https://doi.org/10.3390/molecules21081048.

2. Strader D.B., Navarro V.J., Seeff L.B. Chapter 26 – Hepatotoxicity of herbal preparations. In: Boyer T.D., Manns M.P., Sanyal A.J. (Eds.) Zakim and Boyer's hepatology (6th ed.). Philadelphia, PA: Saunders-Elsevier; 2012: 462–75.

3. Athiroh N., Permatasari N. Mechanism of action of tea parasite on blood vessels. Jurnal Kedokteran Brawijaya. 2012; 27: 1–4 (in Indonesian).

4. Athiroh N., Sulistyowati E. Scurrula atropurpurea increases nitric oxide and decreases malondialdehyde in hypertensive. Universa Medicina. 2013; 32 (1): 44–50.

5. Athiroh N., Permatasari N., Sargowo D., Widodo M. Effect of deoxycorticostreone acetate, DOCA; salt to endothelial progenitor cell and cirulating endothelial cell number in rats animal model. In: Proceeding of International Seminar and Symposium of Vacular and Neurodegenerative Diseases, Brawijaya University, Malang. 2013: 16–20.

6. Athiroh N., Permatasari N., Sargowo D., Widodo M. Antioxidative and blood pressure-lowering effects of Scurrula atropurpurea on deoxycorticosterone acetate-salt hypertensive rats. Biomark Genom Med. 2014; 6 (1): 32–6.

7. Athiroh N., Sulistyowati E. Evaluation of methanolic extract of Scurrula Atropurpurea (Bl.) dans sub-chronic exposure on Wistar rat liver. Adv Environ Biol. 2015; 9 (23): 245–50.

8. Athiroh N., Wahyuningsih D. Study of superoxide dismutase and malondialdehyde concentrations in mice after administration of methanolic extract of Scurrula atropurpurea (Bl.). Jurnal Kedokteran Hewan – Indonesia. 2017; 11 (1): 19–22.

9. Anjani M., Athiroh N., Mubarakati N. 28-day subchronic study: toxicity test of methanolic extract combination of Scurulla atropurpurea and Dendrophthoe pentandra against renal function impairment of female Wistar rats. Jurnal Ilmiah Biosaintropis (Bioscience-Tropic). 2021; 6 (2): 58–63 (in Indonesian).

10. Athiroh N., Permatasari N., Sargowo D., Widodo M.A. Effect of Scurrula atropurpurea on nitric oxide, endothelial damage, and endothelial progenitor cells of DOCA-salt hypertensive rats. Iran J Basic Med Sci. 2014; 17 (8): 622–5.

11. Endharti A., Sulastri E., Umanailo E., et al. Mango mistletoe Dendrophthoe pentandra leaf extract acts synergistically with 5-Fluorouracil to induce apoptosis and increase p21 expression in human cervical adenocarcinoma HeLa cells by reducing survivin expression. J Appl Pharm Sci. 2018; 8 (7): 10–5. https://doi.org/10.7324/JAPS.2018.8702.

12. Endharti A.T., Permana S. Extract from mango mistletoes Dendrophthoe pentandra ameliorates TNBS-induced colitis by regulating CD4+ T cells in mesenteric lymph nodes. BMC Complement Altern Med. 2017; 17 (1): 468. https://doi.org/10.1186/s12906-017-1973-z.

13. Yee L., Fauzi N., Najihah N., et al. Study of Dendrophthoe pentandra ethyl acetate extract as potential anticancer candidate on safety and toxicity aspects. J Anal Pharm Res. 2017; 6 (1): 00167. https://doi.org/10.15406/japlr.2017.05.00167.

14. Hasan M., Ali M.T., Khan R., et al. Hepatoprotective, antihyperglycemic and antidiabetic effects of Dendrophthoe pentandra leaf extract in rats. Clin Phytosci. 2018; 4: 16. https://doi.org/10.1186/s40816-018-0076-9.

15. Szurpnicka A., Kowalczuk A., Szterk A. Biological activity of mistletoe: in vitro and in vivo studies and mechanisms of action. Arch Pharm Res. 2020; 43 (6): 593–629. https://doi.org/10.1007/s12272-020-01247-w.

16. Lailani M., Edward Z., Herman R.B. Blood pressure of male and female Wistar rats after high salt diet. Jurnal Kesehatan Andalas. 2013; 2 (3): 146–50 (in Indonesian).

17. Arifah S.N., Atho’illah M.F., Lukiati B., Lestari S.R. Herbal medicine from single clove garlic oil extract ameliorates hepatic steatosis and oxidative status in high fat diet mice. Malays J Med Sci. 2020; 27 (1): 46–56. https://doi.org/10.21315/mjms2020.27.1.5.

18. Sun S., Wang Y., Wu A., et al. Influence factors of the pharmacokinetics of herbal resourced compounds in clinical practice. Evid Based Complement Alternat Med 2019; 2019: 1983780. https://doi.org/10.1155/2019/1983780.

19. Hikmah U., Santoso H., Athiroh N. Test of serum glutamic oxaloacetic transaminase levels in wistar rats (Rattus novergicus) after administration of methanolic extract of parasite tea (Scurrula atropurpurea Bl Dans) for 28 days (subchronic exposure). Jurnal Ilmu Biosaintropis. 2016; 2 (in Indonesian).

20. Sharma A., Nagalli S. Chronic liver disease. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2023 Jan.

21. Panche A.N., Diwan A.D., Chandra S.R. Flavonoids: an overview. J Nutr Sci. 2016; 5: e47. https://doi.org/10.1017/jns.2016.41.

22. Kurutas E.B. The importance of antioxidants which play the role in cellular response against oxidative/nitrosative stress: current state. Nutr Jl. 2015; 15 (1): 71. https://doi.org/10.1186/s12937-016-0186-5.

23. Minich D.M., Brown B.I. A review of dietary (phyto)nutrients for glutathione support. Nutrients. 2019; 11 (9): 2073. https://doi.org/10.3390/nu11092073.

24. Riyadi P.H., Atho'illah M.F., Tanod W.A., Rahmawati I.S. Tilapia viscera hydrolysate extract alleviates oxidative stress and renal damage in deoxycorticosterone acetate-salt-induced hypertension rats. Vet World. 2020; 13 (11): 2477–83. https://doi.org/10.14202/vetworld.2020.2477-2483.

25. Zachary J.F. Pathologic basis of veterinary disease. 6th ed. Mosby; 2016: 1480 pp.

26. López-Vidaña E.C., Pilatowsky F.I., Cortés F.B., et al. Effect of temperature on antioxidant capacity during drying process of mortiño (Vaccinium meridionale Swartz). Int J Food Props. 2017; 20: 294–305. https://doi.org/10.1080/10942912.2016.1155601.

27. Christina Y.I., Nafisah W., Atho’illah M.F., et al. Anti-breast cancer potential activity of Phaleria macrocarpa (Scheff.) Boerl. leaf extract through in silico studies. J Pharm Pharmacog Res. 2021; 9 (6): 824–45.

28. Wuryandari M.R.E., Widodo N., Widjajanto E., et al. Red Moringa oleifera leaf fermentation extract protecting hepatotoxicity in Balb/C mice injected with Salmonella typhi through Nrf-2, HO-1, and SOD-2 signaling pathways. Res J Pharm Technol. 2020; 13 (12): 5947–52. https://doi.org/10.5958/0974-360X.2020.01038.0.